Authors:
Zsolt Matula 1Országos Hematológiai és Infektológiai Intézet, Szt. László Kórház telephely, Dél-pesti Centrumkórház, 1097 Budapest, Albert Flórián út 5–7.

Search for other papers by Zsolt Matula in
Current site
Google Scholar
PubMed
Close
,
Gábor Mikala 1Országos Hematológiai és Infektológiai Intézet, Szt. László Kórház telephely, Dél-pesti Centrumkórház, 1097 Budapest, Albert Flórián út 5–7.

Search for other papers by Gábor Mikala in
Current site
Google Scholar
PubMed
Close
,
S. Veronika Urbán 2Morfológiai és Fiziológiai Tanszék, Semmelweis Egyetem, Egészségtudományi Kar, Budapest

Search for other papers by S. Veronika Urbán in
Current site
Google Scholar
PubMed
Close
,
István Vályi-Nagy 1Országos Hematológiai és Infektológiai Intézet, Szt. László Kórház telephely, Dél-pesti Centrumkórház, 1097 Budapest, Albert Flórián út 5–7.

Search for other papers by István Vályi-Nagy in
Current site
Google Scholar
PubMed
Close
, and
Ferenc Uher 1Országos Hematológiai és Infektológiai Intézet, Szt. László Kórház telephely, Dél-pesti Centrumkórház, 1097 Budapest, Albert Flórián út 5–7.

Search for other papers by Ferenc Uher in
Current site
Google Scholar
PubMed
Close
Restricted access

Absztrakt:

Az elmúlt évtized aktív kutatómunkája során világossá vált, hogy a csontvelői mikrokörnyezetet strómasejtek heterogén populációja alkotja, ami a hemopoetikus ős- és elődsejtek számára „niche”-eket képez. A kutatások felfedték a niche szerkezetét és az alkotóelemeik közötti információcserét, mely hatást gyakorol az őssejtek termelődésére, fennmaradására és expanziójára. A csontvelői niche változásai hematológiai daganatok során gyakran megfigyelhetőek. Világossá vált, hogy a transzformálódott daganatsejtek és niche-ük között kétirányú az információcsere, a niche pedig korábban nem ismert szerepet játszik a hematológiai neopláziák iniciációjában és progressziójában. Ennek megfelelően, a malignitásra szupportív niche, a stróma terápiás célpontként merül fel hematológiai malignitások gyógykezelése során. Összefoglalónkban a hemopoetikusőssejt-niche biológiájának bemutatását követően bemutatjuk, hogy a strómasejtek genetikai megváltozása és a leukémia következményeként módosuló niche milyen szerepet játszhat a vérképzőszervi daganatok életében.

  • 1

    Schofield R. The relationship between the spleen colony-forming cell and the haemopoietic stem cell. Blood Cells 1978; 4: 7–25.

  • 2

    Hoggatt J, Kfoury Y, Scadden DT. Hematopoietic stem cell niche in health and disease. Annu Rev Pathol. 2016; 11: 555–581.

  • 3

    Crane GM, Jeffery E, Morrison SJ. Adult haematopoietic stem cell niches. Nat Rev Immunol. 2017; 17: 573–590.

  • 4

    Wei Q, Frenette PS. Niches for hematopoietic stem cells and their progeny. Immunity 2018; 48: 632–648.

  • 5

    Sanchez-Aguiler A, Mendez-Ferrer S. The hematopoietic stem-cell niche in health and leukemia. Cell Mol Life Sci. 2017; 74: 579–590.

  • 6

    Doron B, Handu M, Kurre P. Concise review: Adaptation of the bone marrow stroma in hematopoietic malignancies: Current concepts and models. Stem Cells 2018; 36: 304–312.

  • 7

    Acar M, Kocherlakota KS, Murphy MM, et al. Deep imaging of bone marrow shows non-dividing stem cells are mainly perisinusoidal. Nature 2015; 526: 126–130.

  • 8

    Koechlein CS, Harris JR, Lee TK, et al. High-resolution imaging and computational analysis of haematopoietic cell dynamics in vivo. Nat Commun. 2016; 7: 12169.

  • 9

    Kunisaki Y, Bruns I, Scheiermann C, et al. Arteriolar niches maintain haematopoietic stem cell quiescence. Nature 2013; 502: 637–643.

  • 10

    Itkin T, Gur-Cohen S, Spencer JA, et al. Distinct bone marrow blood vessels differentially regulate haematopoiesis. Nature 2016; 532: 323–328.

  • 11

    Méndez-Ferrer S, Michurina TV, Ferraro F, et al. Mesenchymal and haematopoietic stem cells form a unique bone marrow niche. Nature 2010; 466: 829–834.

  • 12

    Kusumbe AP, Ramasamy SK, Itkin T, et al. Age-dependent modulation of vascular niches for haematopoietic stem cells. Nature 2016; 532: 380–384.

  • 13

    Gomariz A, Helbling PM, Isringhausen S, et al. Quantitative spatial analysis of haematopoiesis-regulating stromal cells in the bone marrow microenvironment by 3D microscopy. Nat Commun. 2018; 9: 2532.

  • 14

    Isern J, García-García A, Martín AM, et al. The neural crest is a source of mesenchymal stem cells with specialized hematopoietic stem cell niche function. Elife 2014; 3: e03696.

  • 15

    Maryanovich M, Takeishi S, Frenette PS. Neural regulation of bone and bone marrow. Cold Spring Harb Perspect Med. 2018 Mar 2. pii: a031344. DOI:10.1101/cshperspect.a031344. [Epub ahead of print]

  • 16

    Zhao M, Perry JM, Marshall H, et al. Megakaryocytes maintain homeostatic quiescence and promote post-injury regeneration of hematopoietic stem cells. Nat Med. 2014; 20: 1321–1326.

  • 17

    Sasine JP, Yeo KT, Chute JP. Concise review: Paracrine functions of vascular niche cells in regulating hematopoietic stem cell fate. Stem Cells Transl Med. 2017; 6: 482–489.

  • 18

    Boyd AL, Campbell CJ, Hopkins CI, et al. Niche displacement of human leukemic stem cells uniquely allows their competitive replacement with healthy HSPCs. J Exp Med. 2014; 211: 1925–1935.

  • 19

    Craver BM, El Alaoui K, Scherber RM, Fleischman AG. The critical role of inflammation in the pathogenesis and progression of myeloid malignancies. Cancers (Basel). 2018; 10. pii: E104.

  • 20

    Wang A, Zhong H. Roles of the bone marrow niche in hematopoiesis, leukemogenesis, and chemotherapy resistance in acute myeloid leukemia. Hematology 2018; 14: 1–11.

  • 21

    Testa U, Saulle E, Castelli G, et al. Endothelial progenitor cells in hematologic malignancies. Stem Cell Investig. 2016; 3: 26.

  • 22

    Hanoun M, Zhang D, Mizoguchi T, et al. Acute myelogenous leukemia-induced sympathetic neuropathy promotes malignancy in an altered hematopoietic stem cell niche. Cell Stem Cell 2014; 15: 365–375.

  • 23

    Duarte D, Hawkins ED, Akinduro O, et al. Inhibition of endosteal vascular niche remodeling rescues hematopoietic stem cell loss in AML. Cell Stem Cell 2018; 22: 64–77e66.

  • 24

    Xiao P, Sandhow L, Heshmati Y, et al. Distinct roles of mesenchymal stem and progenitor cells during the development of acute myeloid leukemia in mice. Blood Adv. 2018; 2: 1480–1494.

  • 25

    Schepers K, Pietras EM, Reynaud D, et al. Myeloproliferative neoplasia remodels the endosteal bone marrow niche into a self-reinforcing leukemic niche. Cell Stem Cell 2013; 13: 285–299.

  • 26

    Arranz L, Sanchez-Aguilera A, Martin-Perez D, et al. Neuropathy of haematopoietic stem cell niche is essential for myeloproliferative neoplasms. Nature 2014; 512: 78–81.

  • 27

    Mager LF, Riether C, Schürch CM, et al. IL-33 signaling contributes to the pathogenesis of myeloproliferative neoplasms. J Clin Invest. 2015; 125: 2579–2591.

  • 28

    Hawkins ED, Duarte D, Akinduro O, et al. T-cell acute leukaemia exhibits dynamic interactions with bone marrow microenvironments. Nature 2016; 538: 518–522.

  • 29

    Duan CW, Shi J, Chen J, et al. Leukemia propagating cells rebuild an evolving niche in response to therapy. Cancer Cell 2014; 25: 778–793.

  • 30

    Marino S, Roodman GD. Multiple myeloma and bone: The fatal interaction. Cold Spring Harb Perspect Med. 2018; 8: pii: a031286.

  • 31

    Butler JT, Abdelhamed S, Kurre P. Extracellular vesicles in the hematopoietic microenvironment. Haematologica 2018; 103: 382–394.

  • 32

    Moschoi R, Imbert V, Nebout M, et al. et al. Protective mitochondrial transfer from bone marrow stromal cells to acute myeloid leukemic cells during chemotherapy. Blood 2016; 128: 253–264.

  • 33

    Marlein CR, Zaitseva L, et al. NADPH oxidase-2 derived superoxide drives mitochondrial transfer from bone marrow stromal cells to leukemic blasts. Blood 2017; 130: 1649–1660.

  • 34

    de Rooij B, Polak R, Stalpers F, et al. Tunneling nanotubes facilitate autophagosome transfer in the leukemic niche. Leukemia 2017; 31: 1651–1654.

  • 35

    Walkley CR, Olsen GH, Dworkin S, et al. A microenvironment-induced myeloproliferative syndrome caused by retinoic acid receptor gamma deficiency. Cell 2007; 129: 1097–1110.

  • 36

    Jobe F, Patel B, Kuzmanovic T, Makishima H, et al. Deletion of Ptpn1 induces myeloproliferative neoplasm. Leukemia 2017; 31: 1229–1234.

  • 37

    Dong L, Yu W-M, Zheng H, et al. Leukaemogenic effects of Ptpn11 activating mutations in the stem cell microenvironment. Nature 2016; 539: 304–308.

  • 38

    Kode A, Manavalan JS, Mosialou I, et al. Leukaemogenesis induced by an activating beta-catenin mutation in osteoblasts. Nature 2014; 506: 240–244.

  • 39

    Kode A, Mosialou I, Manavalan SJ, et al. FoxO1-dependent induction of acute myeloid leukemia by osteoblasts in mice. Leukemia 2016; 30: 1–13.

  • 40

    Raaijmakers MH, Mukherjee S, Guo S, et al. Bone progenitor dysfunction induces myelodysplasia and secondary leukaemia. Nature 2010; 464: 852–857.

  • 41

    Zambetti NA, Ping Z, Chen S, et al. Mesenchymal inflammation drives genotoxic stress in hematopoietic stem cells and predicts disease evolution in human pre-leukemia. Cell Stem Cell 2016; 19: 613–627.

  • 42

    Xiao P, Dolinska M, Sandhow L, et al. Sipa1 deficiency-induced bone marrow niche alterations lead to the initiation of myeloproliferative neoplasm. Blood Adv. 2018; 2: 534–548.

  • 43

    Suárez-González J, Martínez-Laperche C, Kwon M, et al. Donor cell-derived hematologic neoplasms after hematopoietic stem cell transplantation: A systematic review. Biol Blood Marrow Transplant. 2018; 24: 1505–1513.

  • 44

    Bowman RL, Busque L, Levine RL. Clonal hematopoiesis and evolution to hematopoietic malignancies. Cell Stem Cell 2018; 22: 157–170.

  • 45

    Desai P, Mencia-Trinchant N, Savenkov O, et al. Somatic mutations precede acute myeloid leukemia years before diagnosis. Nat Med. 2018; 24: 1015–1023.

  • 46

    Kumar SK, Rajkumar V, Kyle RA, et al. Multiple myeloma. Nat Rev Dis Primers. 2017; 3: 17046.

  • 47

    Das R, Strowig T, Verma R, et al. Microenvironment-dependent growth of preneoplastic and malignant plasma cells in humanized mice. Nat Med. 2016; 22: 1351–1357.

  • 48

    Bissell MJ, Hines WC. Why don’t we get more cancer? A proposed role of the microenvironment in restraining cancer progression. Nat Med. 2011; 17: 320–329.

  • 49

    Valkenburg KC, de Groot AE, Pienta KJ. Targeting the tumour stroma to improve cancer therapy. Nat Rev Clin Oncol. 2018; 15: 366–381.

  • Collapse
  • Expand
  • Top

 

The author instruction is available in PDF.
Please, download the file from HERE.
 

 

  • Árpád ILLÉS (Debreceni Egyetem, főszerkesztő)
  • Csaba BÖDÖR (Semmelweis Egyetem, főszerkesztő-helyettes)
  • Judit DEMETER (Semmelweis Egyetem, főszerkesztő-helyettes)
  • Lajos GERGELY (Debreceni Egyetem, főszerkesztő-helyettes)
  • Imelda MARTON (Szegedi Tudományegyetem, főszerkesztő-helyettes)
  • Gábor MIKALA (Dél-Pesti Centrumkórház, Országos Hematológiai és Infektológiai Intézet, főszerkesztő-helyettes)
  • Dezső LEHOCZKY (Semmelweis Egyetem, emeritus főszerkesztő)
  • Sándor FEKETE (Dél-Pesti Centrumkórház, Országos Hematológiai és Infektológiai Intézet, emeritus főszerkesztő)
  • Hajnalka ANDRIKOVICS (Dél-Pesti Centrumkórház, Országos Hematológiai és Infektológiai Intézet, szerkesztő)
  • Zita BORBÉNYI (Szegedi Tudományegyetem, szerkesztő)
  • Miklós EGYED (Somogy Megyei Kaposi Mór Oktató Kórház, szerkesztő)
  • Alizadeh HUSSAIN (Pécsi Tudományegyetem, szerkesztő)
  • Judit JAKAB (Országos Vérellátó Szolgálat, szerkesztő)
  • Béla KAJTÁR (Pécsi Tudományegyetem, szerkesztő)
  • Tamás MASSZI (Semmelweis Egyetem, szerkesztő)
  • Zsolt György NAGY (Semmelweis Egyetem, szerkesztő)
  • György PFLIEGLER (Debreceni Egyetem, szerkesztő)
  • Péter REMÉNYI (Dél-Pesti Centrumkórház, Országos Hematológiai és Infektológiai Intézet, szerkesztő)
  • Marienn RÉTI (Dél-Pesti Centrumkórház, Országos Hematológiai és Infektológiai Intézet, szerkesztő)
  • Tamás SCHNEIDER (Országos Onkológiai Intézet, szerkesztő)
  • László SZERAFIN (Szabolcs-Szatmár-Bereg Megyei Jósa András Oktatókórház, Nyíregyháza, szerkesztő)
  • Attila TORDAI (Semmelweis Egyetem, szerkesztő)

Hematológia-Transzfuziológia Szerkesztőség
Dr. Illés Árpád
Debreceni Egyetem Klinikai Központ
Belgyógyászati Intézet B épület
4012 Debrecen, Nagyerdei krt. 98. Pf.: 20.
E-mail: illesarpaddr@gmail.com

2020  
CrossRef Documents 16
CrossRef Cites 0
CrossRef H-index 1
Days from submission to acceptance 27
Days from acceptance to publication 28
Acceptance Rate 100%

2019  
CrossRef
Documents
27
Acceptance
Rate
98%

 

Hematológia-Transzfuziológia
Publication Model Hybrid
Submission Fee none
Article Processing Charge 900 EUR/article
Regional discounts on country of the funding agency World Bank Lower-middle-income economies: 50%
World Bank Low-income economies: 100%
Further Discounts Editorial Board / Advisory Board members: 50%
Corresponding authors, affiliated to an EISZ member institution subscribing to the journal package of Akadémiai Kiadó: 100%
Subscription fee 2022 Online subscription: 82 EUR / 102 USD
Subscription fee 2023 Online subsscription: 86 EUR / 102 USD
Subscription Information Online subscribers are entitled access to all back issues published by Akadémiai Kiadó for each title for the duration of the subscription, as well as Online First content for the subscribed content.
Purchase per Title Individual articles are sold on the displayed price.

Hematológia-Transzfuziológia
Language Hungarian
Size A4
Year of
Foundation
2004
Volumes
per Year
1
Issues
per Year
4
Founder Magyar Hematológiai és Transzfuziológiai Társaság
Founder's
Address
Szent László Kórház, Hematológiai Osztály H-1097 Budapest, Hungary Gyáli út 5-7.
Publisher Akadémiai Kiadó
Publisher's
Address
H-1117 Budapest, Hungary 1516 Budapest, PO Box 245.
Responsible
Publisher
Chief Executive Officer, Akadémiai Kiadó
ISSN 1786-5913 (Print)

Monthly Content Usage

Abstract Views Full Text Views PDF Downloads
Apr 2022 4 0 0
May 2022 3 0 0
Jun 2022 7 0 0
Jul 2022 2 0 0
Aug 2022 5 0 1
Sep 2022 3 3 0
Oct 2022 0 0 0