View More View Less
  • 1 Magyar Földtani és Geofizikai Intézet Budapest
  • 2 Debreceni Egyetem, Általános Orvostudományi Kar Reumatológiai Tanszék Debrecen Nagyerdei krt. 98. 4032
  • 3 Debreceni Egyetem, Általános Orvostudományi Kar Laboratóriumi Medicina Intézet Debrecen
Restricted access

Purchase article

USD  $25.00

1 year subscription (Individual Only)

USD  $1,070.00

A csontszövet és a geológiai képződmények szerkezeti felépítése közötti hasonlóság lehetővé teszi, hogy a csontszövet szervetlen részét matematikai modellekkel közelítsük. Az elemi összetétel ellenőrizhető a lézerindukált plazmaspektroszkópiai és induktív csatolású plazmaoptikai emissziós spektrometriás mérésekből meghatározott elemoxidkoncentráció-értékekkel. A számításokból és a laboratóriumi mérésekből egyértelműen következik, hogy a csontszövet tulajdonságait elsősorban a hidroxiapatit határozza meg. A szervetlen csontszerkezet igen jól tanulmányozható a lézerindukált plazmaspektroszkópiai technikával megbízhatóan mérhető kalcium-oxid-koncentrációértékek eloszlásainak segítségével. Jelen tanulmányban a szerzők hím szarvasmarha lábszárcsontjaiból készült vékonycsiszolatokon szelvény menti, lézerindukált plazmaspektroszkópiai mérésekből számított kalcium-oxid-koncentráció eloszlásai mutatják be. A kalcium-oxid-koncentrációértékek felületi eloszlásait, „gyakorisági eloszlási” görbék támasztják alá. A több csoportba sorolt kalcium-oxid-koncentrációértékek alapján a corticalis és trabecularis csontszerkezet élesen megkülönböztethető. A szerzők a csontokon elvégzett kvantitatív komputertomográfiái mérésekből számított attenuációs együttható (összsűrűség) és geológiában használt „ρ”-sűrűség között szignifikáns pozitív korrelációt találtak. Továbbá a kiszámított „ρ”-sűrűség és a meghatározott átlag-kalcium-oxid-koncentrációértékek inverz korrelációt mutattak. Orv. Hetil., 2014, 155(45), 1783–1793.

  • Griffith, J. F., Genant, H. K.: Bone mass and architecture determination: state of the art. Best Pract. Res. Clin. Endocrinol. Metab., 2008, 22(5), 737–764.

  • Ralston, S. H.: Bone densitometry and bone biopsy. Best Pract. Res. Clin. Rheumatol., 2005, 19(3), 487–501.

  • Shafer, M. M., Siker, M., Overdier, J. T., et al.: Enhanced methods for assessment of the trace element composition of Iron Age bone. Sci. Total Environ., 2008, 401(1–3), 144–161.

  • García, F., Ortega, A., Domingo, J. L., et al.: Accumulation of metals in autopsy tissues of subjects living in Tarragona County, Spain. J. Environ. Sci. Health A Tox. Hazard. Subst. Environ. Eng., 2001, 36(9), 1767–1786.

  • Uryu, T., Yoshinaga, J., Yanagisawa, Y., et al.: Analysis of lead in tooth enamel by laser ablation-inductively coupled plasma-mass spectrometry. Anal. Sci., 2003, 19(10), 1413–1416.

  • Seltzer, M. D., Lance, V. A., Elsey, R. M.: Laser ablation ICP–MS analysis of the radial distribution of lead in the femur of Alligator mississippiensis. Sci. Total Environ., 2006, 363(1–3), 245–252.

  • Hetter, K. M., Bellis, D. J., Geraghty, C., et al.: Development of candidate reference materials for the measurement of lead in bone. Anal. Bioanal. Chem., 2008, 391(6), 2011–2021.

  • Schütz, A., Olsson, M., Jensen, A., et al.: Lead in finger bone, whole blood, plasma and urine in lead-smelter workers: extended exposure range. Int. Arch. Occup. Environ. Healt, 2005, 78(1), 35–43.

  • Raffalt, A. C., Andersen, J. E., Christgau, S.: Application of inductively coupled plasma-mass spectrometry (ICP–MS) and quality assurance to study the incorporation of strontium into bone, bone marrow, and teeth of dogs after one month of treatment with strontium malonate. Anal. Bioanal. Chem., 2008, 391(6), 2199–2207.

  • Li, R., Yang, H., Wang, K.: La accumulation and microstructure change of leg bones of rats fed with La(NO(3))(3) in low dosage for a long term. Beijing Da Xue Xue Bao, 2003, 35(6), 622–624.

  • Klein, G. L.: Aluminum: new recognition of an old problem. Curr. Opin. Pharmacol., 2005, 5(6), 637–640.

  • Malluche, H. H.: Aluminium and bone disease in chronic renal failure. Nephrol. Dial. Transplant., 2002, 17(Suppl. 2), 21–24.

  • Canavese, C., Mereu, C., Nordio, M., et al.: Blast from the past: the aluminum’s ghost on the lanthanum salts. Curr. Med. Chem., 2005, 12(14), 1631–1636.

  • Reinke, C. M., Breitkreutz, J., Leuenberger, H.: Aluminium in over-the-counter drugs: risks outweigh benefits? Drug Saf., 2003, 26(14), 1011–1025.

  • Barta, C. A., Sachs-Barrable, K., Jia, J., et al.: Lanthanide containing compounds for therapeutic care in bone resorption disorders. Dalton Trans., 2007, 43, 5019–5030.

  • Freemont, A. J.: Lanthanum carbonate. Drugs Today (Barc, 2006, 42(12), 759–770.

  • Bervoets, A. R., Oste, L., Behets, G. J., et al.: Development and reversibility of impaired mineralization associated with lanthanum carbonate treatment in chronic renal failure rats. Bone, 2006, 38(6), 803–810.

  • Bronner, F., Slepchenko, B. M., Pennick, M., et al.: A model of the kinetics of lanthanum in human bone, using data collected during the clinical development of the phosphate binder lanthanum carbonate. Clin. Pharmacokinet., 2008, 47(8), 543–552.

  • Wang, X., Yuan, L., Huang, J., et al.: Lanthanum enhances in vitro osteoblast differentiation via pertussis toxin-sensitive gi protein and ERK signaling pathway. J. Cell. Biochem., 2008, 105(5), 1307–1315.

  • Kazantzis, G.: Cadmium, osteoporosis and calcium metabolism. Biometals, 2004, 17(5), 493–498.

  • Ohta, H., Ichikawa, M., Seki, Y.: Effects of cadmium intake on bone metabolism of mothers during pregnancy and lactation. Tohoku J. Exp. Med., 2002, 196(1), 33–42.

  • Pitt, M. A.: Molybdenum toxicity: interactions between copper, molybdenum and sulphate. Agents Actions, 1976, 6(6), 758–769.

  • Shih, R. A., Hu, H., Weisskopf, M. G., et al.: Cumulative lead dose and cognitive function in adults: a review of studies that measured both blood lead and bone lead. Environ. Health Perspect., 2007, 115(3), 483–492.

  • Holz, J. D., Sheu, T. J., Drissi, H., et al.: Environmental agents affect skeletal growth and development. Birth Defects Res. C. Embryo Today, 2007, 81(1), 41–50.

  • Puzas, J. E., Sickel, M. J., Felter, M. E.: Osteoblasts and chondrocytes are important target cells for the toxic effects of lead. Neurotoxicology, 1992, 13(4), 783–788.

  • Carmouche, J. J., Puzas, J. E., Zhang, X., et al.: Lead exposure inhibits fracture healing and is associated with increased chondrogenesis, delay in cartilage mineralization, and a decrease in osteoprogenitor frequency. Environ. Health Perspect., 2005, 113(6), 749–755.

  • Tapiero, H., Tew, K. D.: Trace elements in human physiology and pathology: zinc and metallothioneins. Biomed. Pharmacother., 2003, 57(9), 399–411.

  • Meunier, N., O’Connor, J. M., Maiani, G., et al.: Importance of zinc in the elderly: the ZENITH study. Eur. J. Clin. Nutr., 2005, 59(Suppl. 2), S1–S4.

  • Lowe, N. M., Fraser, W. D., Jackson, M. J.: Is there a potential therapeutic value of copper and zinc for osteoporosis? Proc. Nutr. Soc., 2002, 61(2), 181–185.

  • Palacios, C.: The role of nutrients in bone health, from A to Z. Crit. Rev. Food Sci. Nutr., 2006, 46(8), 621–628.

  • Harvey, L. J., McArdle, H. J.: Biomarkers of copper status: a brief update. Br. J. Nutr., 2008, 99(Suppl. 3), S10–S13.

  • Danzeisen, R., Araya, M., Harrison, B., et al.: How reliable and robust are current biomarkers for copper status? Br. J. Nutr., 2007, 98(4), 676–683.

  • Mak, T. W., Shek, C. C., Chow, C. C., et al.: Effects of lithium therapy on bone mineral metabolism: a two-year prospective longitudinal study. J. Clin. Endocrinol. Metab., 1998, 83(11), 3857–3859.

  • Tannirandorn, P., Epstein, S.: Drug-induced bone loss. Osteoporos. Int., 2000, 11(8), 637–659.

  • Lewicki, M., Paez, H., Mandalunis, P. M.: Effect of lithium carbonate on subchondral bone in sexually mature Wistar rats. Exp. Toxicol. Pathol., 2006, 58(2–3), 197–201.

  • Pepersack, T., Corvilain, J., Bergmann, P.: Effects of lithium on bone resorption in cultured foetal rat long-bones. Eur. J. Clin. Invest., 1994, 24(6), 400–405.

  • Frederick, J. P., Tafari, A. T., Wu, S. M., et al.: A role for a lithium-inhibited Golgi nucleotidase in skeletal development and sulfation. Proc. Natl. Acad. Sci., USA, 2008, 105(33), 11605–11612.

  • Cohen, O., Rais, T., Lepkifker, E., et al.: Lithium carbonate therapy is not a risk factor for osteoporosis. Horm. Metab. Res., 1998, 30(9), 594–597.

  • Vestergaard, P., Rejnmark, L., Mosekilde, L.: Reduced relative risk of fractures among users of lithium. Calcif. Tissue Int., 2005, 77(1), 1–8.

  • Kitchin, B., Morgan, S. L.: Not just calcium and vitamin D: other nutritional considerations in osteoporosis. Curr. Rheumatol. Rep., 2007, 9(1), 85–92.

  • Takami, M., Shinnichi, S.: Bone and magnesium. Clin. Calcium, 2005, 15(11), 91–96.

  • Ng, A. H., Hercz, G., Kandel, R., et al.: Association between fluoride, magnesium, aluminum and bone quality in renal osteodystrophy. Bone, 2004, 34(1), 216–224.

  • Finley, J. W., Davis, C. D.: Manganese deficiency and toxicity: are high or low dietary amounts of manganese cause for concern? Biofactors, 1999, 10(1), 15–24.

  • Greger, J. L.: Dietary standards for manganese: overlap between nutritional and toxicological studies. J. Nutr., 1998, 128(Suppl.), 368S–371S.

  • Aslam, Chettle D. R., Pejović-Milić, A., et al.: Opportunities to improve the in vivo measurement of manganese in human hands. Phys. Med. Biol., 2009, 54(1), 17–28.

  • Weinberg, E. D.: Role of iron in osteoporosis. Pediatr. Endocrinol. Rev., 2008, 6(Suppl. 1), 81–85.

  • Reginster, J. Y.: Strontium ranelate (Protelos). Rev. Med. Liege, 2007, 62(11), 685–687.

  • Burlet, N., Reginster, J. Y.: Strontium ranelate: the first dual acting treatment for postmenopausal osteoporosis. Clin. Orthop. Relat. Res., 2006, 443, 55–60.

  • Legros, R., Balmain, N., Bonel, G.: Age-related changes in mineral of rat and bovine cortical bone. Calcif. Tissue Int., 1987, 41(3), 137–144.