Bevezetés: A nyugat-nílusi vírus Magyarországon is elterjedt, éves rendszerességgel humán megbetegedéseket okozó, szúnyogok által terjesztett virális zoonosis. Az akut infekciók laboratóriumi differenciáldiagnosztikája szerológiai vizsgálatokon alapul, de a molekuláris módszerek alkalmazhatósága is egyre inkább előtérbe kerül. Célkitűzés: Vizsgálatunk célja a 2015. évi akut fertőzöttek vér-, liquor- és vizeletmintáinak molekuláris vizsgálata volt, illetve a pozitív betegek nyomon követése annak megállapítása érdekében, hogy mennyi ideig detektálható a vírus. Módszer: Az akut fertőzött betegek mintáit indirekt immunfluoreszcens, hemagglutináció-gátlási, majd kétféle PCR-módszerrel vizsgáltuk. A pozitív mintákból a vírustörzseket Sanger-szekvenálással azonosítottuk és vírusizolálást végeztünk. Eredmények: Öt páciens esetén nyílt lehetőség a nyomon követést elvégezni, ennek során a betegek vizeletéből hosszú ideig (a tünetek megjelenésétől számítva akár hetekig) és összehasonlítva más mintatípusokkal, magasabb koncentrációban volt kimutatható a vírus. Következtetések: Akut fertőzések fennállásakor a vizeletminták PCR-vizsgálata járványügyi és diagnosztikai szempontból is hasznos információt szolgáltathat, ezért vizeletminták beküldésével javasoljuk kiegészíteni a szerológiai diagnosztikát. Orv Hetil. 2017; 158(20): 791–796.
Barzon, L., Pacenti, M., Ulbert, S., et al.: Latest developments and challenges in the diagnosis of human West Nile virus infection. Expert Rev. Anti Infect. Ther., 2015, 13, 327–342.
Kutasi, O., Bakonyi, T., Lecollinet, S., et al.: Equine encephalomyelitis outbreak caused by a genetic lineage 2 West Nile virus in Hungary. J. Vet. Intern. Med., 2011, 25, 586–591.
Nagy, A., Bán, E., Nagy, O., et al.: Detection and sequencing of West Nile virus RNA from human urine and serum samples during the 2014 seasonal period. Arch. Virol., 2016, 161, 1797–1806.
Erdélyi, K., Ursu, K., Ferenczi, E., et al.: Clinical and pathologic features of lineage 2 West Nile virus infections in birds of prey in Hungary. Vector Borne Zoonotic Dis., 2006, 7, 181–188.
Bakonyi, T., Hubálek, Z., Rudolf, I., et al.: Novel Flavivirus or new lineage of West Nile virus, Central Europe. Emerg. Infect. Dis., 2005, 11, 225–231.
Bakonyi, T., Ivanics, É., Erdélyi, K., et al.: Lineage 1 and lineage 2 strains of encephalitic West Nile virus, Central Europe. Emerg. Infect. Dis., 2006, 12, 618–623.
Pachler, K., Lebl, K., Berer, D., et al.: Putative new West Nile virus lineage in Uranotaenia unguiculata mosquitoes, Austria, 2013. Emerg. Infect. Dis., 2014, 20, 2119–2122.
Kemenesi, G., Dallos, B., Oldal, M., et al.: Putative novel lineage of West Nile virus in Uranotaenia unguiculata mosquito, Hungary. Virus Dis., 2014, 25, 500–503.
Sambri, V., Capobianchi, M., Charrel, R., et al.: West Nile virus in Europe: emergence, epidemiology, diagnosis, treatment, and prevention. Clin. Microbiol. Infect., 2013, 19, 699–704.
Sampathkumar, P.: West Nile virus: Epidemiology, clinical presentation, diagnostic, and prevention. Mayo Clin. Proc., 2013, 78, 1137–1144.
Szomor, K. N., Rigó, Z., Bán, E., et al.: Serologic evidence of West Nile virus infection in patients with exanthema in Hungary. Acta Microbiol. Immunol. Hung., 2011, 58, 157–167.
Hayes, E. B., Sejvar, J. J., Zaki, S. R., et al.: Virology, pathology, and clinical manifestations of West Nile virus disease. Emerg. Infect. Dis., 2005, 11, 1174–1179.
Papa, A., Testa, T., Papadopoulou, E., et al.: Detection of West Nile virus 2 in the urine of acute human infection. J. Med. Virol., 2014, 86, 2142–2145.
Barzon, L., Pacenti, M., Franchin, E., et al.: Excretion of West Nile virus in urine during acute infection. J. Infect. Dis., 2013, 208, 1086–1092.
Murray, K., Walker, C., Herrington, E., et al.: Persistent infection with West Nile virus years after initial infection. J. Infect. Dis., 2010, 201, 2–4.
Tonry, J. H., Brown, C. B., Cropp, C. B., et al.: West Nile virus detection in urine. Emerg. Infect. Dis., 2005, 11, 1294–1296.
Barzon, L., Pacenti, M., Franchin, E., et al.: Isolation of West Nile virus from urine samples of patients with acute infection. J. Clin. Microbiol., 2014, 52, 3411–3413.
European Commission Implementing Decision, Brussels, 8.8.2012 C(2012) 5538. http://www.fhi.no/dokumenter/23cf9ecb6a.pdf [assessed November 10, 2015].
Linke, S., Ellerbrok, H., Niedrig, M., et al.: Detection of West Nile virus lineages 1 and 2 by real-time PCR. J. Virol. Methods, 2007, 146, 355–358.
Papa, A., Bakonyi, T., Xanthopoulou, K., et al.: Genetic characterization of West Nile virus lineage 2, Greece, 2010. Emerg. Infect. Dis., 2011, 17, 920–922.
Chaskopoulou, A., Dovas, C. I. Chaintoutis, S. C., et al.: Evidence of enzootic circulation of West Nile virus (Nea Santa-Greece-2010, lineage 2), Greece, May to July 2011. Euro Surveill., 2011, 16(31), pii=19933. Available from: http://www.eurosurveillance.org/ViewArticle.aspx?ArticleId=19933
Rios, M., Daniel, S., Chancey, C., et al.: West Nile virus adheres to human red blood cells in whole blood. Clin. Infect. Dis., 2007, 45(2), 181–186.
Lustig, Y., Mannesse, B., Koren, R., et al.: Superiority of West Nile virus RNA detection in whole blood for diagnosis of acute infection. J. Clin. Microbiol., 2016, 54, 2294–2297.