View More View Less
  • 1 Szent István Egyetem, Budapest, Villányi út 29–43., 1118
  • 2 Szent István Egyetem, Budapest
  • 3 Semmelweis Egyetem, Gyógyszerésztudományi Kar, Budapest
Open access

Absztrakt:

A gyümölcsök kedvező egészségi hatását egyre több tanulmány támasztja alá, ami elsősorban a gyümölcs héjában és húsában akkumulálódó polifenolos vegyületeknek tulajdonítható. Ezek transzkripciós, poszttranszkripcionális és epigenetikai szintű hatása egyaránt bizonyított. Mivel a gyümölcsfogyasztás mértéke világszerte elmarad az ajánlott mennyiségtől, egy új megközelítés a kedvező vegyületekben gazdagabb, úgynevezett szupergyümölcsök fogyasztását javasolja. A magyar gyümölcsfajták összehasonlító vizsgálata kimutatta, hogy ugyanazon faj fajtái (eltérő genotípusok) között jelentős mértékű variabilitás jelentkezik számos polifenolos vegyületcsoport mennyiségében. Azonosítottunk olyan meggygenotípusokat (például ’Pipacs 1’ és ’Fanal’), melyek összes polifenoltartalma jelentősen meghaladja a többi fajtára jellemző értékeket. A különböző meggyfajták eltérő polifenoltartalmú gyümölcseinek fiziológiai hatását alimentáris eredetű hyperlipidaemiás modellen, hím Wistar-patkányokon vizsgáltuk. A meggyfogyasztás fajtánként eltérő következménnyel járt: a ’Pipacs 1’ és a ’Fanal’ már 10 napos kezelést követően több, mint 30%-kal mérsékelte a vérplazma összkoleszterinszintjét, míg az ’Újfehértói fürtös’ nem okozott szignifikáns csökkenést. A két előbbi fajta kedvező hatása a szérum más lipidparamétereiben és a máj hisztológiai vizsgálata során is kimutatható volt. Ezen eredmények alapján nemcsak néhány bogyós és trópusi gyümölcs tekinthető szupergyümölcsnek, hanem a csonthéjas gyümölcsök bizonyos genotípusai is. Ezek valóban markánsabb fiziológiai hatást gyakorolnak. Mivel a ’Pipacs 1’ színtelen polifenolokban (például fenolsavak, izoflavonoidok), a ’Fanal’ antocianinokban gazdag, az alimentáris eredetű zsírmájjal szembeni védőhatásban több, különböző polifenolos vegyület szerepe valószínűsíthető. Orv Hetil. 2018, 159(18): 720–725.

If the inline PDF is not rendering correctly, you can download the PDF file here.

  • 1

    Blanchflower D, Oswald A, Stewart-Brown S. Is psychological well-being linked to the consumption of fruit and vegetables? Soc Indic Res. 2013; 114: 785–801.

  • 2

    Cassidy A, Mukamal KJ, Liu L, et al. High anthocyanin intake is associated with a reduced risk of myocardial infarction in young and middle-aged women. Circulation 2013; 127: 188–196.

  • 3

    Martin C, Zhang Y, Tonelli C, et al. Plants, diet, and health. Annu. Rev. Plant Biol. 2013; 64: 19–46.

  • 4

    Ferretti G, Bacchetti T, Belleggia A, et al. Cherry antioxidants: from farm to table. Molecules 2010; 15: 6993–7005.

  • 5

    Seymour EM, Singer AA, Kirakosyan A, et al. Altered hyperlipidemia, hepatic steatosis, and hepatic peroxisome proliferator-activated receptors in rats with intake of tart cherry. J Med Food 2008; 11: 252–259.

  • 6

    Stables G, Goodman LS, Meyer MS, et al. International 5 A Day Programs: A Smorgasbord. In: Stables, G, Heimendinger, J. (eds.) 5 A Day for Better Health Program. National Cancer Institute, Bethesda, MD, 2001; pp. 169–189.

  • 7

    Blanck HM, Gillespie C, Kimmons JE, et al. Trends in fruit and vegetable consumption among U.S. men and women, 1994–2005. Prev Chronic Dis. 2008; 5: A35.

  • 8

    Blando F, Gerardi C, Nicoletti I. Sour cherry (Prunus cerasus L.) anthocyanins as ingredients for functional foods. J Biomed Biotechnol. 2004; 2004: 253–258.

  • 9

    Garcia-Alonso M, de Pascual-Teresa S, Santos-Buelga C, et al. Evaluation of the antioxidant properties of fruits. Food Chem. 2004; 84: 13–18.

  • 10

    Karakaya S, El SN, Tas AA. Antioxidant activity of some foods containing phenolic compounds. Int J Food Sci Nutr. 2001; 52: 501–508.

  • 11

    Veres Z, Remenyik J, Nyéki J, et al. Bioactive agents of sour cherry (Prunus cerasus) with special focus on antioxidant activity and antioxidant density. [A meggy (Prunus cerasus) bioaktív anyagai (különös tekintettel az antioxidáns aktivitásra és antioxidáns sűrűségre).] Agr Közl. 2005; 17: 83–87. [Hungarian]

  • 12

    Sass-Kiss A, Kiss J, Milotay P, et al. Differences in anthocyanin and carotenoid content of fruits and vegetables. Food Res Int. 2005; 38: 1023–1029.

  • 13

    Burkhardt S, Tan DX, Manchester LC, et al. Detection and quantification of the antioxidant melatonin in Montmorency and Balaton tart cherries (Prunus cerasus). J Agr Food Chem. 2001; 49: 4898–4902.

  • 14

    Wang H, Nair MG, Strasburg GM, et al. Novel antioxidant compounds from tart cherries (Prunus cerasus). J Nat Prod. 1999; 62: 86–88.

  • 15

    Bonerz D, Würth K, Dietrich H, et al. Analytical characterization and the impact of ageing on anthocyanin composition and degradation in juices from five sour cherry cultivars. Eur Food Res Technol. 2007; 224: 355–364.

  • 16

    Chaovanalikit A, Wrolstad RE. Total anthocyanins and total phenolics of fresh and processed cherries and their antioxidant properties. J Food Sci. 2004; 69: FCT67–FCT72.

  • 17

    Kang SY, Seeram NP, Nair MG, et al. Tart cherry anthocyanins inhibit tumor development in ApcMin mice and reduce proliferation of human colon cancer cells. Cancer Lett. 2003; 194: 13–19.

  • 18

    Seeram NP, Bourquin LD, Nair MG. Degradation products of cyanidin glycosides from tart cherries and their bioactivities. J Agr Food Chem. 2001; 49: 4924–4929.

  • 19

    G. Tóth M. Sour cherry. In: G. Tóth M. (ed.) Pomology. [Meggy. In: G. Tóth M. (szerk.): Gyümölcsészet.] Primon Vállalkozásélénkítő Alapítvány, Nyíregyháza, 2001; pp. 268–288. [Hungarian]

  • 20

    Kirakosyan A, Seymour EM, Noon KR, et al. Interactions of antioxidants isolated from tart cherry (Prunus cerasus) fruits. Food Chem. 2010, 122: 78–83.

  • 21

    Chaovanalikit A, Wrolstad RE. Anthocyanin and polyphenolic composition of fresh and processed cherries. J Food Sci. 2004; 69: FCT73–FCT83.

  • 22

    Piccolella S, Fiorentino A, Pacifico S, et al. Antioxidant properties of sour cherries (Prunus cerasus L.): role of colorless phytochemicals from the methanolic extract of ripe fruits. J Agr Food Chem. 2008; 56: 1928–1935.

  • 23

    Papp N, Szilvássy B, Abrankó L, et al. Main quality attributes and antioxidants in Hungarian sour cherries: identification of genotypes with enhanced functional properties. Int J Food Sci Tech. 2010; 45: 395–402.

  • 24

    Hegedűs A. Characterization of genetic variability in fruit antioxidant power. [A csonthéjas gyümölcsök antioxidáns hatásában megnyilvánuló genetikai variabilitás jellemzése.] MTA doktori értekezés, Budapest, 2013. [Hungarian]

  • 25

    Hegedűs A, Engel R, Abrankó L, et al. Antioxidant and antiradical capacities in apricot (Prunus armeniaca L.) fruits: Variations from genotypes, years, and analytical methods. J Food Sci. 2010; 75: C722–C730.

  • 26

    Hegedűs A, Balogh E, Engel R, et al. Comparative nutrient element and antioxidant characterization of berry fruit species and cultivars grown in Hungary. HortScience 2008; 43: 1711–1715.

  • 27

    Usenik V, Fabcic J, Stampar F. Sugars, organic acids, phenolic composition and antioxidant activity of sweet cherry (Prunus avium L.). Food Chem. 2008; 107: 185–192.

  • 28

    Abrankó L, Nagy Á, Szilvássy B, et al. Genistein isoflavone glycoconjugates in sour cherry (Prunus cerasus L.) cultivars. Food Chem. 2015; 166: 215–222.

  • 29

    Papp N, Blázovics A, Fébel H, et al. Antihyperlipidemic effects of sour cherries characterized by different in vitro antioxidant power and polyphenolic composition. Plant Foods Hum Nutr. 2015; 70: 408–413.

  • 30

    McCune LM, Kubota C, Stendell-Hollis NR, et al. Cherries and health: a review. Crit Rev Food Sci Nutr. 2011; 51: 1–12.

  • 31

    Seeram NP, Momin RA, Nair MG, et al. Cyclooxygenase inhibitory and antioxidant cyanidin glycosides in cherries and berries. Phytomedicine 2001; 8: 362–369.

  • 32

    Tall JM, Seeram NP, Zhao C, et al. Tart cherry anthocyanins suppress inflammation-induced pain behavior in rat. Behav Brain Res. 2004; 153: 181–188.

  • 33

    Saric A, Sobocanec S, Balog T, et al. Improved antioxidant and anti-inflammatory potential in mice consuming sour cherry juice (Prunus cerasus cv. Maraska). Plant Foods Hum Nutr. 2009; 64: 231–237.

  • 34

    Connolly DA, McHugh MP, Padilla-Zakour OI, et al. Efficacy of a tart cherry juice blend in preventing the symptoms of muscle damage. Br J Sports Med. 2006; 40: 679–683.

  • 35

    Hevesi M, Blázovics A, Kállay E, et al. Biological activity of sour cherry fruit on the bacterial flora of human saliva in vitro. Food Technol Biotechnol. 2012; 50: 117–122.

  • 36

    Khoo GM, Clausen MR, Pedersen BH, et al. Bioactivity and total phenolic content of 34 sour cherry cultivars. J Food Comp Anal. 2011; 24: 772–776.

  • 37

    Glass CK, Witztum JL. Atherosclerosis: the road ahead. Cell 2001; 104: 503–516.

  • 38

    Chen C, Kong AN. Dietary cancer-chemopreventive compounds: from signaling and gene expression to pharmacological effects. Trends Pharmacol Sci. 2005; 26: 318–326.

  • 39

    Kim DO, Heo HJ, Kim YJ, et al. Sweet and sour cherry phenolics and their protective effects on neuronal cells. J Agr Food Chem. 2005; 53: 9921–9927.

  • 40

    Kraft J. Studies on fruit trees. [Abhandlung von den Obstbäumen.] Bécs, 1792. (Reprint Pytheas Kiadó, Budapest, 2009.) [German]

  • 41

    Taylor CK, Levy RM, Elliott JC, et al. The effect of genistein aglycone on cancer and cancer risk: a review of in vitro, preclinical, and clinical studies. Nutr Rev. 2009; 67: 398–415.

  • 42

    Dave B, Eason RR, Till SR, et al. The soy isoflavone genistein promotes apoptosis in mammary epithelial cells by inducing the tumor suppressor PTEN. Carcinogenesis 2005; 26: 1793–1803.

  • 43

    Shufelt C, Bairey Merz CN, Yang Y, et al. Red versus white wine as a nutritional aromatase inhibitor in premenopausal women: a pilot study. J Womens Health 2012; 21: 281–284.

  • 44

    Karius T, Schnekenburger M, Dicato M, et al. MicroRNAs in cancer management and their modulation by dietary agents. Biochem Pharmacol. 2012; 83: 1591–1601.