View More View Less
  • 1 Magyar Honvédség Egészségügyi Központ, Budapest
  • 2 Csongrád Megyei Kormányhivatal, Szeged, Derkovits fasor 7–11., 6725
Restricted access

Purchase article

USD  $25.00

1 year subscription (Individual Only)

USD  $1,070.00

Absztrakt:

A kanyaró az egyik legsúlyosabb megelőzhető fertőző megbetegedés, mely hazánkban az elmúlt 10–20 évben a ritkábban előforduló kórképek közé tartozott. Ennek egyik oka, hogy az 1969 után született magyar lakosság átoltottsága közel 99%-os. A másik ok pedig az, hogy az oltási érát megelőző időszakban a gyakran előforduló országos kanyarójárványok az érintettekben életre szóló immunitást hagytak maguk után. A természetes és a mesterséges immunizáció így összességében tehát kiterjedt nyájimmunitást biztosított a populációnak. Az Európában jelenleg is zajló kanyarójárványok azonban rávilágítottak arra, hogy a megbetegedéssel kapcsolatos tünettani és differenciáldiagnosztikai ismeretek az utóbbi 20 évben háttérbe szorultak. Az európai kanyarójárványok hazánkra vonatkozó konzekvenciájának áttekintése mellett a jelen közlemény célja a kanyaró járványügyi kontrolljához szükséges klinikai és labordiagnosztikai ismeretek felelevenítése és összefoglalása. Orv Hetil. 2019; 160(20): 767–773.

  • 1

    Mándi Y. Paramyxoviruses. In: Pál T. (ed.) Textbook of medical microbiology. [Paramyxovírusok. In: Pál T. (szerk.) Az orvosi mikrobiológia tankönyve.] Medicina Könyvkiadó, Budapest, 2012; pp. 213–217. [Hungarian]

  • 2

    Chen SS. Measles. In: Steele RW, et al. (eds.) Overview practice essentials. Available from: http://emedicine.medscape.com/article/966220-overview [accessed: December 9, 2018].

  • 3

    Orosz L, Gáspár G, Rózsa Á, et al. Epidemiological situation of measles in Romania, Italy, and Hungary: on what threats should we focus nowadays? Acta Microbiol Immunol Hung. 2018; 65: 127–134.

  • 4

    Gershon A. Measles virus. In: Mandell GL, Bennett JE, Dolin R. (eds.) Mandell, Douglas, and Bennett’s principles and practice of infectious diseases. 7th edition. Churchill Livingstone Elsevier, London, 2010; pp. 2229–2236.

  • 5

    Mészner Zs, Timár L. Morbilli. In: Szalka A, Timár L, Ludwig E, et al. (eds.) Infectology. [Morbilli. In: Szalka A, Timár L, Ludwig E, et al. (szerk.) Infektológia.] Medicina Könyvkiadó, Budapest, 2005; pp. 259–261. [Hungarian]

  • 6

    Information from the National Centre for Epidemiology of Hungary on measles. [Az Országos Epidemiológiai Központ tájékoztatója a kanyaróról.] Állami Népegészségügyi és Tisztiorvosi Szolgálat, Budapest, 2017. 03. 13. Available from: https://www.antsz.hu/felso_menu/temaink/jarvany/jarvany_archivum/kanyaro/tajekoztatokanyarorol.html [accessed: December 9, 2018].

  • 7

    Fisher DL, Defres S, Solomon T, et al. Measles-induced encephalitis. QJM 2015; 108: 177–182.

  • 8

    Hosoya M. Measles encephalitis: direct viral invasion or autoimmune-mediated inflammation. Intern Med. 2006; 45: 841–842.

  • 9

    Sonneville R, Klein IF, Wolff M, et al. Update on investigation and management of postinfectious encephalitis. Curr Opin Neurol. 2010; 23: 300–304.

  • 10

    Cherry JD. Measles virus. In: Cherry JD. (ed.) Feigin and Cherry’s textbook of pediatric infectious diseases. Elsevier Saunders, Philadelphia, PA, 2014; pp. 2373–2395.

  • 11

    Honarmand S, Glaser CA, Chow E, et al. Subacute sclerosing panencephalitis in the differential diagnosis of encephalitis. Neurology 2004; 63: 1489–1493.

  • 12

    Quiambao BP, Gatchalian SR, Halonen P, et al. Coinfection is common in measles-associated pneumonia. Pediatr Infect Dis J. 1998; 17: 89–93.

  • 13

    Hussey GD, Clements CJ. Clinical problems in measles case management. Ann Trop Paediatr. 1996; 16: 307–317.

  • 14

    Dinh A, Fleuret V, Hanslik T, et al. Liver involvement in adults with measles. Int J Infect Dis. 2013; 17: e1243–e1244.

  • 15

    Végh M, Hári-Kovács A, Roth HW, et al. Ophthalmological symptoms of measles and their treatment. [A kanyaró szemészeti tünetei és kezelése.] Orv Hetil. 2017; 158: 1523–1527. [Hungarian]

  • 16

    Foster A, Sommer A. Corneal ulceration, measles, and childhood blindness in Tanzania. Br J Ophthalmol. 1987; 71: 331–343.

  • 17

    Chassort A, Coutherut J, Moreau-Klein A, et al. Renal dysfunction in adults during measles. Med Mal Infect. 2015; 45: 165–168.

  • 18

    Drago F, Paolino S, Rebora A, et al. The challenge of diagnosing atypical exanthems: a clinico-laboratory study. J Am Acad Dermatol. 2012; 67: 1282–1288.

  • 19

    Razonable RR. Human herpesviruses 6, 7 and 8 in solid organ transplant recipients. Am J Transplant. 2013; 13 (Suppl 3): 67–77.

  • 20

    Mage V, Lipsker D, Barbarot S, et al. Different patterns of skin manifestations associated with parvovirus B19 primary infection in adults. J Am Acad Dermatol. 2014; 71: 62–69.

  • 21

    Martinez JD, Garza JA, Cuellar-Barboza A. Going viral 2019: Zika, Chikungunya, and Dengue. Dermatol Clin. 2019; 37: 95–105.

  • 22

    Holzmann H, Hengel H, Tenbusch M, et al. Eradication of measles: remaining challenges. Med Microbiol Immunol. 2016; 205: 201–208.

  • 23

    McFarlin DE, Bellini WJ, Mingioli ES, et al. Monospecific antibody to the haemagglutinin of measles virus. J Gen Virol. 1980; 48: 425–429.

  • 24

    Kang HJ, Han YW, Kim SJ, et al. An increasing, potentially measles-susceptible population over time after vaccination in Korea. Vaccine 2017; 35: 4126–4132.

  • 25

    Christenson B, Böttiger M. Measles antibody: comparison of long-term vaccination titres, early vaccination titres and naturally acquired immunity to and booster effects on the measles virus. Vaccine 1994; 12: 129–133.

  • 26

    Cohen BJ, Doblas D, Andrews N, et al. Comparison of plaque reduction neutralisation test (PRNT) and measles virus-specific IgG ELISA for assessing immunogenicity of measles vaccination. Vaccine 2008; 26: 6392–6397.

  • 27

    Cohen BJ, Audet S, Andrews N, et al. Plaque reduction neutralization test for measles antibodies: description of a standardised laboratory method for use in immunogenicity studies of aerosol vaccination. Vaccine 2007; 26: 59–66.

  • 28

    Mancuso JD, Krauss MR, Audet S, et al. ELISA underestimates measles antibody seroprevalence in US military recruits. Vaccine 2008; 26: 4877–4878.

  • 29

    Chen RT, Markowitz LE, Albrecht P, et al. Measles antibody: reevaluation of protective titers. J Infect Dis. 1990; 162: 1036–1042.

  • 30

    Measles cases hit record high in the European Region. Available from: http://www.euro.who.int/en/media-centre/sections/press-releases/2018/measles-cases-hit-record-high-in-the-european-region [accessed: December 9, 2018].

  • 31

    European Centre for Disease Prevention and Control. Monthly measles and rubella monitoring report. Solna, August 2018. Available from: https://ecdc.europa.eu/en/publications-data/monthly-measles-and-rubella-monitoring-report-august-2018 [accessed: December 9, 2018].

  • 32

    Report on Communicable Diseases in Hungary between 2013 and 2017. [Bejelentett fertőző megbetegedések Magyarországon 2013–2017.] Available from: https://www.antsz.hu/data/cms87738/Fertozo_2017.pdf [accessed: December 9, 2018].

  • 33

    Lengyel G, Marossy A, Ánosi N, et al. Screening of more than 2000 Hungarian healthcare workers’ anti-measles antibody level: results and possible population-level consequences. Epidemiol Infect. 2019; 147: E7. [Epub 2018 Sep 11]

  • 34

    Böröcz K, Csizmadia Z, Markovics Á, et al. Development of a robust and standardized immunoserological assay for detection of anti-measles IgG antibodies in human sera. J Immunol Methods 2019; 464: 1–8.

  • 35

    Tomášková H, Zelená H, Kloudová A, et al. Serological survey of measles immunity in the Czech Republic, 2013. Cent Eur J Public Health 2018; 26: 22–27.

  • 36

    Zibolenová J, Chladná Z, Švihrová V, et al. Estimation of the population susceptibility against measles in Slovakia. Cent Eur J Public Health 2017; 25: 46–54.

  • 37

    Smetana J, Chlibek R, Hanovcova I, et al. Decreasing seroprevalence of measles antibodies after vaccination – possible gap in measles protection in adults in the Czech Republic. PLoS ONE 2017; 12: e0170257.

  • 38

    Durrheim D. Measles elimination, immunity, serosurveys, and other immunity gap diagnostic tools. J Infect Dis. 2018; 218: 341–343.

  • 39

    Winter AK, Martinez ME, Cutts FT, et al. Benefits and challenges in using seroprevalence data to inform models for measles and rubella elimination. J Infect Dis. 2018; 218: 355–364.