A hazánk területének megközelítően 10%-át fedő szikes talajokban zajló talajkémiai folyamatok részletes vizsgálatával ellentétben, a talajmikrobiológiai folyamatokról és állapotokról kevesebb ismerettel rendelkezünk. Munkánkban ezért egy réti szolonyec talaj kémiai, fizikai és mikrobiológiai tulajdonságait vizsgáltuk szántó és rét hasznosítású területen.
Munkánk célja a rét és szántó művelési ág talajkémiai, -fizikai és - mikrobiológiai tulajdonságainak megállapítása, a kémiai és mikrobiológiai tulajdonságok közötti kapcsolatok feltárása réti szolonyec talajon, ahol a korábbi vizsgálatok elsősorban a talajkémiai változásokra koncentráltak.
A szántó és rét művelési ág talaja egyes kémiai és mikrobiológiai paraméterekben szignifikánsan különbözött egymástól. A talaj mikrobiológiai aktivitása, a talajban élő mikrobák mennyisége egyaránt nagyobb volt a rétként hasznosított területen. Eredményeink felhívják a figyelmet a minél hosszabb ideig tartó növényborítás biztosításának fontosságára a talaj szervesanyag-tartalmának megőrzésében, növelésében, és az ehhez szorosan kapcsolódó aktívabb talajéletfenntartásában.
A művelési ág hatása olyan erőteljes a talaj vizsgált mikrobiológiai változóira, hogy azok statisztikailag elkülönítették a szántó és rét művelési ágakat annak ellenére, hogy a korábbi mintavételi terület két-két, a területekre jellemző mikrobiális biomassza szén szélsőértéket mutató pontjaiból vettük a talajmintákat. Ugyanakkor a vizsgált kémiai, fizikai változók csoportja még nem igazolta a két művelési ág talajmintáinak statisztikai különbségét. Eredményeink tehát igazolják, hogy a talajok mikrobiológiai paraméterei gyorsabban jelezhetik a talajokban bekövetkező, esetleges negatív változásokat, mint a kémiai és/vagy fizikai paraméterek.
Allison, S.D., Weintraub, M.N., Gartner, T.B., Waldrop, M.P. 2011. Evolutionaryeconomic principles as regulators of soil enzyme production and ecosystem function. In: Soil Enzymology, Shukla, G. & Varma, A. (eds). Springer: Berlin, Germany; pp. 229–243.
Ábrahám, L. & Ginál I. 1967. Szolonyec talajok néhány jellemző tulajdonságának változása szántóföldi művelés hatására. Agrokémia és Talajtan. 16. 57–66.
Arunkumar, K., Singh, R.D., Patra, A.K., Sahu, S.K., 2013. Probing of microbial community structure, dehydrogenase and soil carbon in-relation to different land uses in soils of Ranichauri (garhwal Himalayas). International Journal of Current Microbiology and Applied Sciences. 2. 325–338.
Ballenegger, R. & di Gl Éria, J., 1962. Talaj- és Trágyavizsgálati Módszerek. Mezőgazdasági Kiadó, Budapest. p.: 231–233.
Bíró, B., Villányi, I. & Köves-Péchy, K. 2002. Abundance and adaptation level of some soil microbes in salt-affected soils. Agrokémia és Talajtan. 51. 99–106.
Brookes, P. 2001. The soil microbial biomass: concept, measurement and applications in soil ecosystem research. Microbes and Environments. 16. 131–140.
Brookes, P.C., Landman, A., Pruden, G., Jenkinson, D.S. 1985. Chloroform fumigation and the release of soil nitrogen: a rapid direct extraction method for measuring microbial biomass nitrogen in soil. Soil Biology and Biochemistry. 17. 837–842.
Buzás I. 1988. Talaj-és agrokémiai vizsgálati módszerkönyv 2. A talajok fizikaikémiai és kémiai vizsgálati módszerei. Mezőgazdasági Kiadó. Budapest.
Buzás I. 1993. Talaj- és agrokémiai vizsgálati módszerkönyv 1: A talaj fizikai, vízgazdálkodási és ásványtani vizsgálata. INDA 4231 Kiadó. Budapest.
Carter, M.R. 1993. Soil Sampling and Methods of Analysis. Lewis Publishers. Toronto.
Casida, L.E. Jr., Klein, D.A., Santoro, T. 1964. Soil dehydrogenase activity. Soil Science. 98. 371–376.
Cheng, F., Peng, X., Zhao, P., Yuan, J., Zhong, C., Cheng, Y., Cui, C., Zhang, S. 2013. Soil microbial biomass, basal respiration and enzyme activity of main forest types in the Qinling Mountains. PLoS One. 8. e67353.
Douglas, J.T., Goss, M.J. 1982. Stability and organic matter content of surface soil aggregates under different methods of cultivation and in grassland. Soil& Tillage Research 2. 155–175.
Drenovsky, R.E., Steenwert, K.L., Louise E. Jackson, L.E., Scow, K.M. 2010. Land use and climatic factors structure regional patterns in soil microbial communities. Global Ecology and Biogeography. 19. 27–39.
Egner, H., Riehm, H., Domingo W. 1960. Untersuchungen über die chemische Bodenanalyse als Grundlage für die Beurteilung des Nährstoffzustandes der Böden II. Chemische Extraktionsmethoden zur Phosphor- und Kaliumbestimmung. Kungl. Lantbrukshögsk. Ann. 26. 199–215.
Elmajdoub, B., Marschner, P., 2015. Response of microbial acivity and biomass to soil salinity when supplied with glucose and cellulose. Journal of Soil Science and Plant Nutrition. 15. 816–832.
Frankenberger, W.T., Bingham, F.T. 1982. Influence of salinity on soil enzyme activities. Soil Science Society American Journal. 46. 1173–1177.
Füzy, A., Bíró, B., Tóth, T., Hildebrandt, U., Bothe, H., 2008. Drought; but not salinity determines the apparent effectiveness of halophytes colonized by arbuscular mycorrhizal fungi. Journal of Plant Physiology. 165. 1181–1192.
Gangwar, R.K., Makádi, M., Fuchs, M., Csorba, Michéli, E., Demeter, I., Szegi, T. 2018. Comparison of biological and chemical properties of arable and pasture Solonetz soils. Agrokémia és Talajtan 67. 61–77.
Halbritter, A., Uzinger, N., 2005. A talaj-mikrobióta vizsgálata foszfolipidek alapján. I. Szükségesség és alkalmazási lehetőségek. Agrokémia és Talajtan. 54. 517–534.
Helgason, B.L., Walley, F.L., Germida, J.J., 2010. Long-term no-till management affects microbial biomass but not community composition in Canadian prairie agroecosystems. Soil Biology & Biochemistry. 42. 2192–2202
Hinsinger, P., Plassard, C., Tang, C., Jaillard, B. 2003. Origins of root-mediated pH changes in the rhizosphere and their responses to environmental constraints: A review. Plant and Soil. 248. 43–59.
Janglid, K., Williams, M.A., Franzluebbers, A.J., Schmidt, T.M., Coleman, D.C., Whitman, W.B., 2011. Land-use history has a stronger impact on soil microbial community composition than aboveground vegetation and soil properties. Soil Biology & Biochemistry. 43. 2184–2193.
Jassó, F., Horváth, B., Izsó, B., Király, L., ParÁszka, L., Szabóné Kele G. 1989. Útmutató a nagyméretarányú országos talajtérképezés végrehajtásához '88 mellélet. AGROINFORM, Budapest
Khalif, A. A., Abdorhim, H., Bayoumi, H., Hosam, A. F., Oldal B., Kecskés M. 2005. Mikrobaszám és enzimaktivitás változás a szárazbabfajták (Phaseolus vulgaris L.) rizoszférájában sóterhelés hatására. Agrokémia és Talajtan. 54. (3–4). 451–464.
Lauber, C.L., Hamady, M., Knight, R., Fierer, N. 2009. Pyrosequensing-based assessment of soil pH as a predictor of soil bacterialncommunity structure at the continental scale. Applied and Environmental Microbiology. 75. 5111–5120.
Li, M., Jiang, L., Sun, Z., Wang, J., Rui, Y., Zhong, L., Wang, Y., Kardol, p. 2012. Effects of flue gas desulfurization gypsum by-products on microbial biomass and community structure in alkaline-saline soils. Journal of Soils and Sediments. 12. 1040–1053.
Liebig, M.A., Tanaka, D.J., Wienhold, B.J. 2004. Tillage and cropping effects on soil quality indicators in the northern Great Plains. Soil and Tillage Research. 78. 131–141.
McBride, M.B. 1994. Environmental chemistry of soils. Oxford University Press, Inc., New York.
Moeskops, B., Buchan, D., Van Beneden, S., Fievez, V., Sleutel, S., Gasper, M.S., D'Hose, T., De Neve, S., 2012. The impact of exogenous organic matter on SOM contents and microbial soil quality. Pedobiologia — International Journal of Soil Biology. 55. 175–184.
Mucsi M. , Csontos P., Borsodi A., Krett G., Gazdag O., Szili-Kovács T., 2017. A mikrorespirációs (MicroRespTM) módszer alkalmazása apajpusztai szikes talajok mikrobaközösségeinek katabolikus aktivitás mintázatának vizsgálatára. Agrokémia és Talajtan. 66. (1). 165–179.
Nakatani, A.S., Nogueira, M.A., Martines, A.M., Dos Santos, C.A., Baldesi, L.F., Marschner, P., Cardoso, E.J.B.N., 2012. Applied Soil Ecology. 61. 92–99.
Nelson, P.N, Barzegar, A.R., Oades, J.M. 1997. Sodicity and clay type: influence on decomposition of added organic matter. Soil Science Society of America Journal. 61. 1052–1057.
Nelson, P.N. & Oades, J.M. 1998. Organic matter, sodicity and soil structure. In Sodic soils: distribution, properties, management and environmental consequences. Topics in sustainable agronomy, Sumner ME, Naidu R (eds). Oxford University Press: New York, USA. 51–75.
Page, A.L., Miller, R.H., Keeney, D.R. (eds.). 1982. Methods of Soil Analysis. Part 2 (2nd ed.). Agronomy Monograph 9. ASA and SSSA. Madison. WI. pp. 591–592.
Pankhurst, C. E. et al., 1995. Evaluation of soil biological properties as potential bioindicators of soil health. Australian Journal of Experimetal Agriculture. 35. 1015–1028.
Ponder, F., Tadros, M. 2002. Phospholipid fatty acids in forest soil four years after organic matter removal and soil compaction. Applied Soil Eciology. 19. 173–182.
Powlson, D. S., Brookes, P. C. & Christensen, B. T. 1987. Measurements of soil microbial biomass provides an early indication of changes in total soil organic matter due to straw incorporation. Soil Biology & Biochemistry. 19. 159–164.
Rao, M.A., Violante, A., Glanfreda, L.. 2000. Interaction of acid phosphatase with clays, organic molecules and organo-mineral complexes: kinetics and stability. Soil Biology & Biochemistry. 32. 1007–1014.
Rengasamy, O., Greene, R.S.B., Ford, G.W., Mehanni, A.H. 1984. Identification of Dispersive Behaviour and the Management of Red-brown Earths. Australian Journal of Soil Research. 22: 413–31.
Rousk, J., Brookes, P.C., Bååth, E. 2010. The microbial PLFA composition as affected by pH in an arable soil. Soil Biology & Biochemistry. 42. 516–520.
Rietz, D.N. & Haynes, R.J. 2003. Effects of irrigation-induced salinity and sodicity on soil microbial activity. Soil Biology & Biochemistry. 35. 845–854.
Singh, K. 2016. Microbial and enzyme activities of saline and sodic soils. Land Degradation and Development 27. 706–718.
Sinsabaugh, R.L., Lauber, C.L., Weintraub, M.N., Ahmed, B., Allison, S.D., Crenshaw, C., Zeglin, L.H. 2008. Stoichiometry of soil enzyme activity at global scale. Ecology Letters. 11. 1252–1264.
Stefanovits, P. 1992. Talajtan, Mezőgazda Kiadó, 4. kiad. Budapest. pp. 242.
Stevenson, F. J. 1994. Humus Chemistry 2nd Edition John Wiley & Sons Inc.
Szabolcs, I. (SZERK) 1996. A Genetikus Üzemi Talajtérképezés Módszerkönyve, OMMI Budapest. pp. 201
Szentirmay, A. 1996. A mikrobiológia alapjai. Egyetemi jegyzet. Kossuth Egyetemi Kiadó, Debrecen. pp. 89–90, 348–351.
Szili-Kovács, T., Kátai, J., Takács, T. 2011. Mikrobiológiai indikátorok alkalmazása a talajminőségértékelésében. Agrokémia és Talajtan. 60. 273–286.
Tabatabai, M.A., Bremner, J.M. 1969. Use of p-nitrophenyl phosphate for assay of soil phosphatase activity. Soil Biology & Biochemistry. 1. 301–307.
Tóth T. & Szendrei 2006. A hazai szikes talajok és a szikesedés, valamint a sófelhalmozódási folyamatok rövid jellemzése Topographia Mineralogica Hungariae Vol. IX. 7–20. Miskolc.
Vance, E.D., Brookes, P.C., Jenkinson, D.S. 1987. An extraction method for measuring soil microbial biomass C. Soil Biology & Biochemistry. 19. 703–707.
van Leeuwen, J.P., Djukic, I., Bloem, J., Lehtinen, T., Hemerik, L., de Ruiter, P.C., Lair, G.J. 2017. Effects on land use on soil microbial biomass, activity and community structure at different soil depth in the Danube floodplain. European Journal of Soil Biology. 79. 14–20.
Walkley, A. & Black, I.A. 1934. An examination of the Degtjareff method for determining soil organic matter and a proposed modification of the chromic acid titration method. Soil Science. 37. (1). 29–38.
White D. C. , Davis W. M., Nickels J. S., King J. D., Bobbie R. J., 1979. Determination of the sedimentary microbial biomass by extractible lipid phosphate. Oecologia 40. 51–62.
Xue, D., Yao, H-Y., Ge, D-Y., Huang, C-Y., 2008. Soil microbial Community Structure in Diverse L and use systems: A comparative study using Biolog, DGGE, and PLFA analyses. Pedosphere. 18. 653–663.
Yu, W-T., Bi, M-L., Xu, Y-G., Zhou, H.Z., Ma, Q., Jiang, C-M., 2013. Microbial biomass and community composition in a Luvisol soil as influenced by longterm land use and fertilization. Catena. 107. 89–95.
Zak, D.R., Pregitzer, K.S., Curtis, P.S., Holmes, W.E., 2000. Athmospheric CO2 and the composition and functionnof soil microbial communities. Ecological Applications. 10. 47–59.
Zelles, L. , 1999. Fatty acid patterns of phospholipids and lipopolysaccharides in the characterisation of microbial communities in soil: a review. Biology and fertility of Soils. 29. 111–129.