View More View Less
  • 1 Semmelweis Egyetem, Általános Orvostudományi Kar, Budapest, Baross u. 27., 1088
  • | 2 Semmelweis Egyetem, Általános Orvostudományi Kar, Budapest
Open access

Absztrakt

Bevezetés: A nőbetegek onkológiai kezelése a petefészek-működés károsodását okozhatja. Ennek megelőzésére lehetőség van a petefészekszövet mélyfagyasztására, hosszú távú tárolására, majd a petefészek-működést károsító beavatkozások után a szövetminták visszaültetésére. Célkitűzés: Jelen tanulmányban a szerzők azt vizsgálták, hogy a petefészekszövet-fagyasztás módszerei mennyiben befolyásolják a felolvasztott szövetminták életképességét. Módszer: A munka során 10 kutatási célra felajánlott szövetminta fagyasztását-felolvasztását végezték el, majd a szövetminták túlélését vizsgálták. Szövettani vizsgálatokkal hasonlították össze a friss és a fagyasztott-felolvasztott mintákban lévő tüszők állapotát, illetve meghatározták hormontermelésüket. Eredmények: Szövettani vizsgálatokkal igazolták, hogy a fagyasztott-felolvasztott mintákban az életképesnek tűnő tüszők száma 23%-kal csökkent, de még a szövettenyésztést követően is megfigyeltek életképes tüszőket. A felolvasztott szövetminták maximális ösztradioltermelése 908 pg/ml volt, és a hormontermelés mértéke a friss mintákéhoz hasonló értékeket mutatott. A felolvasztott szövetek progeszterontermelésének maximuma 1,95 ng/ml volt, amely elmaradt a friss szövetminták hormonértékeitől. Következtetések: A szerzők által alkalmazott petefészekszövet-fagyasztási módszerrel biztosítható a tüszők fagyasztás-felolvasztás utáni túlélése, így intézetükben megkezdték a módszer kísérleti klinikai alkalmazását daganatos betegek termékenységének megőrzése céljából. Orv. Hetil., 2016, 157(49), 1947–1954.

  • 1

    Donnez, J., Jadoul, P., Squifflet, J., et al.: Ovarian tissue cryopreservation and transplantation in cancer patients. Best Pract. Res. Clin. Obstet. Gynaecol., 2010, 24(1), 87–100.

  • 2

    van der Kaaij, M. A., Heutte, N., Meijnders, P., et al.: Premature ovarian failure and fertility in long-term survivors of Hodgkin’s lymphoma: a European Organisation for Research and Treatment of Cancer Lymphoma Group and Groupe d’Étude des Lymphomes de l’Adulte Cohort Study. J. Clin. Oncol., 2012, 30(3), 291–299.

  • 3

    Smith, A. U., Parkes, A. S.: Preservation of ovarian tissue at low temperatures. Lancet, 1951, 258(6683), 570–572.

  • 4

    Parrott, D. M.: The fertility of mice with orthotopic ovarian grafts derived from froozen tissue. J. Reprod. Fertil., 1960, 1, 230–241.

  • 5

    Gosden, R. G., Baird, D. T., Wade, J. C., et al.: Restoration of fertility to oophorectomized sheep by ovarian autografts stored at –196 °C. Hum. Reprod., 1994, 9(4), 597–603.

  • 6

    Hovatta, O., Silye, R., Krausz, T., et al.: Cryopreservation of human ovarian tissue using dimethylsulphoxide and propanediol-sucrose as cryoprotectants. Hum. Reprod., 1996, 11(6), 1268–1272.

  • 7

    Donnez, J., Dolmans, M. M., Demylle, D., et al.: Livebirth after orthotopic transplantation of cryopreserved ovarian tissue. Lancet, 2004, 364(9443), 1405–1410.

  • 8

    Dolmans, M. M.: Ovarian transplantation. Hum. Reprod., 2014, 29(Suppl. 1), i18.

  • 9

    Donnez, J., Dolmans, M. M.: Ovarian cortex transplantation: 60 reported live births brings the success and worldwide expansion of the technique towards routine clinical practice. J. Assist. Reprod. Genet., 2015, 32(8), 1167–1170.

  • 10

    Donnez, J., Dolmans, M. M., Pellicer, A., et al.: Restoration of ovarian activity and pregnancy after transplantation of cryopreserved ovarian tissue: a review of 60 cases of reimplantation. Fertil. Steril., 2013, 99(6), 1503–1513.

  • 11

    Amorim, C. A., Curaba, M., Van Langendonckt, A., et al.: Vitrification as an alternative means of cryopreserving ovarian tissue. Reprod. Biomed. Online, 2011, 23(2), 160–186.

  • 12

    Isachenko, V., Isachenko, E., Reinsberg, J., et al.: Cryopreservation of human ovarian tissue: comparison of rapid and conventional freezing. Cryobiology, 2007, 55(3), 261–268.

  • 13

    Bastings, L., Liebenthron, J., Westphal, J. R., et al.: Efficacy of ovarian tissue cryopreservation in a major European center. J. Assist. Reprod. Genet., 2014, 31(8), 1003–1012.

  • 14

    Zhou, X. H., Wu, Y. J., Shi, J., et al.: Cryopreservation of human ovarian tissue: comparison of novel direct cover vitrification and conventional vitrification. Cryobiology, 2010, 60(2), 101–105.

  • 15

    Chambers, E. L., Gosden, R. G., Yap, C., et al.:In situ identification of follicles in ovarian cortex as a tool for quantifying follicle density, viability and developmental potential in strategies to preserve female fertility. Hum. Reprod., 2010, 25(10), 2559–2568.

  • 16

    Kristensen, S. G., Rasmussen, A., Byskov, A. G., et al.: Isolation of pre-antral follicles from human ovarian medulla tissue. Hum. Reprod., 2011, 26(1), 157–166.

  • 17

    Rosendahl, M., Schmidt, K. T., Ernst, E., et al.: Cryopreservation of ovarian tissue for a decade in Denmark: a view of the technique. Reprod. Biomed. Online, 2011, 22(2), 162–171.

  • 18

    Sánchez, M., Novella-Maestre, E., Teruel, J., et al.: The Valencia Programme for Fertility Preservation. Clin. Transl. Oncol., 2008, 10(7), 433–438.

  • 19

    Hreinsson, J., Zhang, P., Swahn, M. L., et al.: Cryopreservation of follicles in human ovarian cortical tissue. Comparison of serum and human serum albumin in the cryoprotectant solutions. Hum. Reprod., 2003, 18(11), 2420–2428.

  • 20

    Oktay, K., Newton, H., Gosden, R. G.: Transplantation of cryopreserved human ovarian tissue results in follicle growth initiation in SCID mice. Fertil. Steril., 2000, 73(3), 599–603.

  • 21

    Sanfilippo S., Canis M., Ouchchane L., et al.: Viability assessment of fresh and frozen/thawed isolated human follicles: reliability of two methods (Trypan blue and Calcein AM/ethidium homodimer-1). J. Assist. Reprod. Genet., 2011, 28(12), 1151–1156.

  • 22

    Huang, L., Mo, Y., Wang, W., et al.: Cryopreservation of human ovarian tissue by solid-surface vitrification. Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol., 2008, 139(2), 193–198.

  • 23

    Xiao, Z., Wang, Y., Li, L., et al.: Needle immersed vitrification can lower the concentration of cryoprotectant in human ovarian tissue cryopreservation. Fertil. Steril., 2010, 94(6), 2323–2328.

  • 24

    Oktem, O., Alper, E., Balaban, B., et al.: Vitrified human ovaries have fewer primordial follicles and produce less antimüllerian hormone than slow-frozen ovaries. Fertil. Steril., 2011, 95(8), 2661–2664.e1.

  • 25

    Marsella, T., Sena, P., Xella, S., et al.: Human ovarian tissue cryopreservation: effect of sucrose concentration on morphological features after thawing. Reprod. Biomed. Online, 2008, 16(2), 257–267.

  • 26

    Sanfilippo, S., Canis, M., Romero, S., et al.: Quality and functionality of human ovarian tissue after cryopreservation using an original slow freezing procedure. J. Assist. Reprod. Genet., 2013, 30(1), 25–34.

All Time Past Year Past 30 Days
Abstract Views 0 0 0
Full Text Views 122 86 7
PDF Downloads 65 48 1