View More View Less
  • 1 Semmelweis Egyetem, Budapest, Üllői út 78/B, I. emelet, 1082
Open access

Absztrakt:

Bevezetés: A nem fermentáló Gram-negatív baktériumok a környezetben széles körben elterjedtek. Többségükkel opportunista, nosocomialis patogénként találkozunk a klinikai gyakorlatban. A csoport jól ismert tagjai (például a Pseudomonas vagy az Acinetobacter fajok) mellett ritkább fajok is identifikálásra kerülnek, különösen, mióta a klinikai mikrobiológiai gyakorlatba bevezetésre került a „mátrix-asszisztált lézer deszorpciós-ionizációs, repülési idő mérésén alapuló tömegspektrometria” (MALDI-TOF MS) technika. A ritkábban előforduló Gram-negatív baktériumok döntő része légúti mintákból kerül izolálásra. Klinikai jelentőségük az alsó légúti fertőzésekben, akárcsak klinikai mikrobiológiai vizsgálatuk szabályai, egyelőre tisztázatlanok. Célkitűzés: Néhány fontosabb, ritkábban előforduló, alsó légúti fertőzést okozó Gram-negatív pálca klinikai mikrobiológiai jellemzése. Módszer: Négy év adatainak retrospektív feldolgozásával áttekintettük a nem fermentáló Gram-negatív baktériumok alsó légúti fertőzésekben potenciálisan betöltött szerepét és antibiotikum-érzékenységét a Semmelweis Egyetemen. Összesen 3589 beteg alsó légúti mintáit elemeztük a 2013–2016 négyéves periódusban. A baktériumok azonosítása minden esetben MALDI-TOF MS módszerrel, az antibiotikum-érzékenységi vizsgálat pedig döntően korongdiffúziós módszerrel történt. Eredmények: A Pseudomonas aeruginosát követően a Stenotrophomonas maltophilia volt a második, míg az Acinetobacter baumannii a harmadik leggyakrabban azonosított nem fermentáló Gram-negatív baktérium az alsó légúti mintákban. Összesen 742 olyan izolátumot azonosítottunk, melyek a ritka nem fermentáló pálcák csoportjába tartoztak. Az izolátumok 23%-a Achromobacter xylosoxidans volt. A Chryseobacterium, Rhizobium, Delftia és Elizabethkingia fajok mellett néhány Ralstonia és Ochrobactrum, valamint egy-egy egyéb baktériumfajt azonosítottunk. A pontos fajazonosítás kiemelt jelentőségű, mivel e baktériumok nagy része természetes aminoglikozid-rezisztenciával bír. Gyakran rezisztensek ceftazidimre, cefepimre, piperacillin/tazobactamra és karbapenemekre is. Következtetések: Összességében a ciprofloxacin, a levofloxacin és a trimethoprim/sulfamethoxazol bizonyult a leghatékonyabbnak a csoport tagjaival szemben. Orv Hetil. 2018; 159(1): 23–30.

If the inline PDF is not rendering correctly, you can download the PDF file here.

  • 1

    Nagy E, Ábrók M, Bartha N, et al. Special application of matrix-assisted laser desorption ionization time-of-flight mass spectrometry in clinical microbiological diagnostics. [Mátrix-asszisztált lézer deszorpciós, ionizációs, repülési idő mérésén alapuló tömegspektrometria speciális alkalmazása a klinikai mikrobiológiai diagnosztika területén.] Orv Hetil. 2014; 155: 1495–1503. [Hungarian]

  • 2

    Czirók É. Clinical and epidemiological bacteriology. [Klinikai és járványügyi bakteriológia.] Melánia Kft., Budapest, 1999. [Hungarian]

  • 3

    European Committee on Antimicrobial Susceptibility Testing. Clinical breakpoints, 2017. Available from: http://www.eucast.org/clinical_breakpoints/

  • 4

    Lobo LJ, Tulu Z, Aris RM, et al. Pan-resistant Achromobacter xylosoxidans and Stenotrophomonas maltophilia infection in cystic fibrosis does not reduce survival after lung transplantation. Transplantation 2015; 99: 2196–2202.

  • 5

    Swenson CE, Sadikot RT. Achromobacter respiratory infections. Ann Am Thorac Soc. 2015; 12: 252–258.

  • 6

    Liu C, Pan F, Guo J, et al. Hospital acquired pneumonia due to Achromobacter spp. in a geriatric ward in China: clinical characteristic, genome variability, biofilm production, antibiotic resistance and integron in isolated strains. Front Microbiol. 2016; 7: 621.

  • 7

    European Committee on Antimicrobial Susceptibility Testing. Expert rules and intrinsic resistance, 2016. Available from: http://www.eucast.org/expert_rules_and_intrinsic_resistance/

  • 8

    Abbott IJ, Peleg AY. Stenotrophomonas, Achromobacter, and nonmelioid Burkholderia species: antimicrobial resistance and therapeutic strategies. Semin Respir Crit Care Med. 2015; 36: 99–110.

  • 9

    Hu Y, Zhu Y, Ma Y, et al. Genomic insights into intrinsic and acquired drug resistance mechanisms in Achromobacter xylosoxidans. Antimicrob Agents Chemother. 2015; 59: 1152–1161.

  • 10

    Sader HS, Jones RN. Antimicrobial susceptibility of uncommonly isolated non-enteric Gram-negative bacilli. Int J Antimicrob Agents 2005; 25: 95–109.

  • 11

    Virok DP, Ábrók M, Szél B, et al. Chryseobacterium gleum – a novel bacterium species detected in neonatal respiratory tract infections. J Matern Fetal Neonatal Med. 2014; 27: 1926–1929.

  • 12

    Soydan S, Ignak S, Unay Demirel O, et al. Chryseobacterium indolegenes infection in a patient with chronic obstructive pulmonary disease. Drug Discov Ther. 2017; 11: 165–167.

  • 13

    Homem de Mello de Souza HA, Dalla-Costa LM, Vicenzi FJ, et al. MALDI-TOF: A useful tool for laboratory identification of uncommon glucose non-fermenting Gram-negative bacteria associated with cystic fibrosis. J Med Microbiol. 2014; 63: 1148–1153.

  • 14

    Chen FL, Wang GC, Teng SO, et al. Clinical and epidemiological features of Chryseobacterium indologenes infections: analysis of 215 cases. J Microbiol Immunol Infect. 2013; 46: 425–432.

  • 15

    Bilgin H, Sarmis A, Tigen E, et al. Delftia acidovorans: A rare pathogen in immunocompetent and immunocompromised patients. Can J Infect Dis Med Microbiol. 2015; 26: 277–279.

  • 16

    Kang H, Xu X, Fu K, et al. Characterization and genomic analysis of quinolone-resistant Delftia sp. 670 isolated from a patient who died from severe pneumonia. Curr Microbiol. 2015; 71: 54–61.

  • 17

    Opota O, Diene SM, Bertelli C, et al. Genome of the carbapenemase-producing clinical isolate Elizabethkingia miricola EM_CHUV and comparative genomics with Elizabethkingia meningoseptica and Elizabethkingia anophelis: evidence for intrinsic multidrug resistance trait of emerging pathogens. Int J Antimicrob Agents 2017; 49: 93–97.

  • 18

    Han MS, Kim H, Lee Y, et al. Relative prevalence and antimicrobial susceptibility of clinical iolates of Elizabethkingia species based on 16S rRNA gene sequencing. J Clin Microbiol. 2017; 55: 274–280.

  • 19

    Ryan MP, Adley CC. Ralstonia spp.: emerging global opportunistic pathogens. Eur J Clin Microbiol Infect Dis. 2014; 33: 291–304.

  • 20

    Ryan MP, Adley CC. The antibiotic susceptibility of water-based bacteria Ralstonia pickettii and Ralstonia insidiosa. J Med Microbiol. 2013; 62: 1025–1031.

  • 21

    Naik C, Kulkarni H, Darabi A, et al. Ochrobactrum anthropi: a rare cause of pneumonia. J Infect Chemother. 2013; 19: 162–165.

  • 22

    Thoma B, Straube E, Scholz HC, et al. Identification and antimicrobial susceptibilities of Ochrobactrum spp. Int J Med Microbiol. 2009; 299: 209–220.

  • 23

    Tiwari S, Beriha SS. Primary bacteremia caused by Rhizobium radiobacter in neonate: A rare case report. J Clin Diagn Res. 2015; 9: DD01–DD02.

  • 24

    Zhang HP, Fan JM, Huang DH, et al. Clinical and microbiological characteristics of Rhizobium radiobacter infections: six cases report and literature review. Zhonghua Jie He He Hu Xi Za Zhi 2010; 33: 93–98.

  • 25

    Sood S, Nerurkar V, Malvankar S. Catheter associated bloodstream infection caused by R. radiobacter. Indian J Med Microbiol. 2010; 28: 62–64.

  • 26

    Toh HS, Tay HT, Kuar WK, et al. Risk factors associated with Sphingomonas paucimobilis infection. J Microbiol Immunol Infect. 2011; 44: 289–295.

  • 27

    Juhász E, Krizsán G, Lengyel G, et al. Infection and colonization by Stenotrophomonas maltophilia: antimicrobial susceptibility and clinical background of strains isolated at a tertiary care centre in Hungary. Ann Clin Microbiol Antimicrob. 2014; 13: 333.

  • 28

    Camargo CH, Ferreira AM, Javaroni E, et al. Microbiological characterization of Delftia acidovorans clinical isolates from patients in an intensive care unit in Brazil. Diagn Microbiol Infect Dis. 2014; 80: 330–333.

  • 29

    Wenzler E, Fraidenburg DR, Scardina T, et al. Inhaled antibiotics for Gram-negative respiratory infections. Clin Microbiol Rev. 2016; 29: 581–632.

  • 30

    Juhász E, Kovács A, Pongrácz J, et al. In vitro activity of colistin and trimethoprim/sulfamethoxazole against consortia of multidrug resistant non-fermenting Gram-negative bacilli isolated from lower respiratory tract. Jundishapur J Microbiol. 2017; 10: e14034.

  • 31

    Tom SK, Yau YC, Beaudoin T, et al. Effect of high-dose antimicrobials on biofilm growth of Achromobacter species isolated from cystic fibrosis patients. Antimicrob Agents Chemother. 2015; 60: 650–652.

The author instructions are available in PDF.
Instructions for Authors in Hungarian HERE.

Mendeley citation style is available HERE.

 

MANUSCRIPT SUBMISSION

  • Impact Factor (2018): 0.564
  • Medicine (miscellaneous) SJR Quartile Score (2018): Q3
  • Scimago Journal Rank (2018): 0.193
  • SJR Hirsch-Index (2018): 18

Language: Hungarian

Founded in 1857
Publication: Weekly, one volume of 52 issues annually

Senior editors

Editor(s)-in-Chief: Papp Zoltán

Read the professional career of Papp Zoltán HERE.

 

Editorial Board

Click for the Editorial Board

Akadémiai Kiadó
Address: Prielle Kornélia u. 21-35. H-1117 Budapest, Hungary
Phone: (+36 1) 464 8235 ---- Fax: (+36 1) 464 8221
Email: orvosihetilap@akkrt.hu