View More View Less
  • 1 Debreceni Egyetem, Fogorvostudományi Kar, Debrecen, Nagyerdei körút 98., 4032
  • 2 Debreceni Egyetem, Fogorvostudományi Kar, Debrecen

Absztrakt:

A mindennapi fogászati praxisban igen fontos a sterilitás. Az egyes eszközök és anyagok csírátlanítása azonban eltérő módszereket igényel. A hőérzékeny és rugalmas, elasztikus anyagok esetén a legelterjedtebb sterilizálási módok azért nem használhatók, mert alacsonyabb hőmérsékletű sterilizálás szükséges, hogy ne veszítsék el eredeti fizikai tulajdonságaikat. Ezen anyagok közé tartozik a kofferdam lepedő is, mely rugalmasságától megfosztva alkalmatlanná válik izolálási feladatának ellátására a fogmegtartó kezelések során. Gumilepedő csírátlanítására ritkán kerül sor, bizonyos esetek megoldása azonban megkívánhatja azt. Ilyen szituációban a fogorvosnak viszonylag limitált, sokszor nehezen elérhető eszköztárból kell választania. Közleményünk sorra veszi a sterilizálóeljárásokat, különös figyelmet szentelve a plazmasterilizálásnak, illetve a hidrogén-peroxid-gázt használó eljárásoknak. Esetbemutatásunkban egy kiterjedt, a fog koronai és gyökéri területét is érintő ínyszél alá terjedő fraktúra ellátása során az adhezív technika alkalmazhatóságát hidrogén-peroxid-gázt használó készülékben sterilizált kofferdam lepedő felhelyezésével biztosítottuk. Orv Hetil. 2020; 161(3): 110–115.

If the inline PDF is not rendering correctly, you can download the PDF file here.

  • 1

    Condrin AK. Disinfection and sterilization in dentistry. Tex Dent J. 2014; 131: 604–608.

  • 2

    Boscariol MR, Moreira AJ, Mansano RD, et al. Sterilization by pure oxygen plasma and by oxygen-hydrogen peroxide plasma: an efficacy study. Int J Pharm. 2008; 353: 170–175.

  • 3

    Klämpfl TG, Isbary G, Shimizu T, et al. Cold atmospheric air plasma sterilization against spores and other microorganisms of clinical interest. Appl Environ Microbiol. 2012; 78: 5077–5082.

  • 4

    Győrfi A, Fazekas Á. Significance of infection control in dentistry. [Az infekciókontroll jelentősége a fogászatban.] Fogorv Szle. 2007; 100: 141–152. [Hungarian]

  • 5

    Apinhasmit W, Limsombutanon S, Swasdison S, et al. Effects of autoclave sterilization on properties of dental rubber dam as related to its use as barrier membrane in guided tissue regeneration. J Periodontal Res. 2003; 38: 538–542.

  • 6

    Mourya DT, Shahani HC, Yadav PD, et al. Use of hydrogen peroxide vapour & plasma irradiation in combination for quick decontamination of closed chambers. Indian J Med Res. 2016; 144: 245–249.

  • 7

    Tamazawa K, Shintani H, Tamazawa Y, et al. Sterilization effect of wet oxygen plasma in the bubbling method. Biocontrol Sci. 2015; 20: 255–261.

  • 8

    Shintani H. Application of vapor phase hydrogen peroxide sterilization to endoscope. Biocontrol Sci. 2009; 14: 39–45.

  • 9

    Hall L, Otter JA, Chewins J, et al. Use of hydrogen peroxide vapor for deactivation of Mycobacterium tuberculosis in a biological safety cabinet and a room. J Clin Microbiol. 2007; 45: 810–815.

  • 10

    Shintani H, Sakudo A, Burke P, et al. Gas plasma sterilization of microorganisms and mechanisms of action. Exp Ther Med. 2010; 1: 731–738.

  • 11

    Kawamura K, Sakuma A, Nakamura Y, et al. Evaluation of bactericidal effects of low-temperature nitrogen gas plasma towards application to short-time sterilization. Microbiol Immunol. 2012; 56: 431–440.

  • 12

    Andreasen JO, Lauridsen E, Gerds TA, et al. Dental Trauma Guide: a source of evidence-based treatment guidelines for dental trauma. Dent Traumatol. 2012; 28: 345–350.

  • 13

    Zeighami S, Siadat H, Nikzad S. Full mouth reconstruction of a bruxer with severely worn dentition: a clinical report. Case Rep Dent. 2015; 2015: 531618.

  • 14

    Rippe MP, Santini MF, Bier CA, et al. Root canal filling: fracture strength of fiber-reinforced composite-restored roots and finite element analysis. Braz Dent J. 2013; 24: 619–625.

  • 15

    Plotino G, Grande NM, Bedini R, et al. Flexural properties of endodontic posts and human root dentin. Dent Mater. 2007; 23: 1129–1135.

  • 16

    Papadogiannis D, Dimitriadi M, Zafiropoulou M, et al. Universal adhesives: setting characteristics and reactivity with dentin. Materials (Basel) 2019; 12: 1720.

  • 17

    De Vito Moraes AG, Francci C, Carvalho CN, et al. Microshear bond strength of self-etching systems associated with a hydrophobic resin layer. J Adhes Dent. 2011; 13: 341–348.

  • 18

    Oliveira B, Ubaldini A, Baesso ML, et al. Chemical interaction and interface analysis of self-etch adhesives containing 10-MDP and methacrylamide with the dentin in noncarious cervical lesions. Oper Dent. 2018; 43: E253–E265.

  • 19

    Fujita-Nakajima K, Aoki-Tabei N, Arita A, et al. NMR study on the demineralization mechanism of the enamel and dentin surfaces in MDP-based all-in-one adhesive. Dent Mater J. 2018; 37: 693–701.

  • 20

    Brown SA, Merritt K, Woods TO, et al. Effects of different disinfection and sterilization methods on tensile strength of materials used for single-use devices. Biomed Instrum Technol. 2002; 36: 23–27.

Monthly Content Usage

Abstract Views Full Text Views PDF Downloads
Oct 2020 0 18 12
Nov 2020 0 25 25
Dec 2020 0 14 14
Jan 2021 0 25 40
Feb 2021 0 12 29
Mar 2021 0 15 21
Apr 2021 0 7 13