Authors:
Orsolya Nagy Nemzeti Népegészségügyi Központ, Virológiai Laboratóriumi Osztály Budapest, Albert Flórián út 2–6., 1097
Semmelweis Egyetem, Általános Orvostudományi Kar, Orvosi Mikrobiológiai Intézet Budapest

Search for other papers by Orsolya Nagy in
Current site
Google Scholar
PubMed
Close
,
Anna Nagy Nemzeti Népegészségügyi Központ, Virológiai Laboratóriumi Osztály Budapest, Albert Flórián út 2–6., 1097

Search for other papers by Anna Nagy in
Current site
Google Scholar
PubMed
Close
,
Szilvia Tóth Dél-pesti Centrumkórház – Országos Hematológiai és Infektológiai Intézet, Infektológiai Osztály Budapest

Search for other papers by Szilvia Tóth in
Current site
Google Scholar
PubMed
Close
,
Anita Koroknai Nemzeti Népegészségügyi Központ, Virológiai Laboratóriumi Osztály Budapest, Albert Flórián út 2–6., 1097

Search for other papers by Anita Koroknai in
Current site
Google Scholar
PubMed
Close
, and
Mária Takács Nemzeti Népegészségügyi Központ, Virológiai Laboratóriumi Osztály Budapest, Albert Flórián út 2–6., 1097
Semmelweis Egyetem, Általános Orvostudományi Kar, Orvosi Mikrobiológiai Intézet Budapest

Search for other papers by Mária Takács in
Current site
Google Scholar
PubMed
Close
Open access

Összefoglaló. Bevezetés: A Dengue-, Zika- és Chikungunya-vírus-fertőzések a trópusokról importált leggyakoribb arbovírusfertőzések. Földrajzi elterjedésük átfedő, közös vektoraik és hasonló tüneteik miatt szerológiai és molekuláris módszerek együttes alkalmazásán alapuló mikrobiológiai vizsgálatokkal különíthetők el megbízhatóan. Célkitűzés: Munkánk célja a 2016 és 2020 között endémiás területen járt, tünetes és tünetmentes utazók vizsgálata volt, minden esetben mindhárom vírusfertőzés irányában. A diagnosztikus tesztek során az alvadásgátolt teljes vér és vizelet bevonásával vizsgáltuk a vírus-RNS kimutathatóságának esélyét a különböző mintatípusokból. Módszer: Savópárminták szerológiai analízise során a Dengue-, Zika- és Chikungunya-vírus-specifikus ellenanyagválasz alakulását vizsgáltuk ELISA-módszerrel. Reaktív eredmények esetében a szerológiai keresztreakciók kizárására immunfluoreszcens és ELISA-technikán alapuló további vizsgálatokat végeztünk a hazai és az utazás során érintett területeken előforduló flavi- és alphavirusok irányában. Vérsavó-, alvadásgátolt teljes vér és vizeletmintákból reverztranszkripciót követő valós idejű polimeráz-láncreakcióval vírus-RNS-kimutatást végeztünk. Eredmények: Az 1037 vizsgált utazó közül 133 esetben kaptunk reaktív szerológiai és/vagy molekuláris eredményt. Az alvadásgátolt teljes vér mintából sikerült a legnagyobb arányban vírusnukleinsavat kimutatni mind a Dengue- és Zika-, mind a Chikungunya-vírus esetében. Megbeszélés: Endémiás területről hazatért utazók vizsgálatát a tünetek hasonlósága miatt mindhárom vírusfertőzés irányában együttesen indokolt elvégezni. A flavi- és alphavirusokra jellemző nagyfokú szerológiai keresztreaktivitás miatt a nukleinsav-kimutatás javíthatja a mikrobiológiai diagnosztika pontosságát. Következtetés: A három vírus mikrobiológiai diagnosztikáját segíti a korai mintavétel és a molekuláris vizsgálatok kiterjesztése további mintatípusokra: alvadásgátolt teljes vér és vizelet. A behurcolt vírusfertőzések azonosítása fokozott jelentőségű, mert az Európában is jelen lévő vektorszúnyogfajok felvetik az autochton átvitel lehetőségét. Orv Hetil. 2021; 162(50): 2000–2009.

Summary. Introduction: Dengue-, Zika- and Chikungunya infections are among the most frequently imported tropical arbovirus infections. Due to their shared endemic regions, vectors and similar clinical symptoms, differential diagnosis is based on serological and molecular analysis. Objective: The aim of our study was to identify the imported arbovirus infections of travellers between 2016 and 2020. Furthermore, to improve the diagnostic sensitivity, anticoagulated whole blood and urine samples were involved in molecular diagnosis. Method: Virus-specific antibody kinetics was tested in paired sera of patients by ELISA method. In case of reactive results, further serological analysis was performed using immunofluorescence assays and/or ELISA tests to exclude serological cross-reactions caused by other members of the flavi- and alphaviruses. Detection of viral RNA was attempted from serum, anticoagulated whole blood and urine specimens using reverse transcription and real-time polymerase chain reaction. Results: Out of the tested 1037 travellers, reactive serological and/or molecular results were obtained in 133 cases. Anticoagulated whole blood proved to be the most suitable specimen for viral RNA detection of the three viruses. Discussion: Parallel testing of Dengue-, Zika- and Chikungunya infections is recommended, as symptom-based differential diagnosis is challenging. Due to the characteristic serological cross-reactivity of flavi- and alphaviruses, microbiological diagnosis relies on both serological and molecular tests. Conclusion: Involving anticoagulated whole blood and urine samples into molecular analysis and early sample collection improve the sensitivity of microbiological diagnostics. Identification of imported tropical arbovirus infections is of high importance as the presence of vector mosquitos in Europe raises the possibility of autochthon transmission. Orv Hetil. 2021; 162(50): 2000–2009.

  • 1

    Weaver SC, Reisen WK. Present and future arboviral threats. Antiviral Res. 2010; 85: 328–345.

  • 2

    Vasilakis N, Weaver SC. Flavivirus transmission focusing on Zika. Curr Opin Virol. 2017; 22: 30–35.

  • 3

    Weaver SC, Barrett AD. Transmission cycles, host range, evolution and emergence of arboviral disease. Nat Rev Microbiol. 2004; 2: 789–801.

  • 4

    Patterson J, Sammon M, Garg M. Dengue, Zika and Chikungunya: emerging arboviruses in the New World. West J Emerg Med. 2016; 17: 671–679.

  • 5

    Centers for Disease Control and Prevention. Division of vector-borne diseases. Memorandum. Revised diagnostic testing for Zika, Chikungunya, and Dengue viruses in US Public Health Laboratories. CDC, Atlanta, GA, February 2016. Available from: https://stacks.cdc.gov/view/cdc/38149 [accessed: February 18, 2021].

  • 6

    Mansfield KL, Horton DL, Johnson N, et al. Flavivirus-induced antibody cross-reactivity. J Gen Virol. 2011; 92: 2821–2829.

  • 7

    Henss L, Yue C, Kandler J, et al. Establishment of an alphavirus-specific neutralization assay to distinguish infections with different members of the Semliki Forest complex. Viruses 2019; 11: 82.

  • 8

    Nagy A, Mezei E, Nagy O, et al. Extraordinary increase in West Nile virus cases and first confirmed human Usutu virus infection in Hungary, 2018. Euro Surveill. 2019; 24: 1900038.

  • 9

    Nagy A, Nagy O, Tarcsai K, et al. First detection of tick-borne encephalitis virus RNA in clinical specimens of acutely ill patients in Hungary. Ticks Tick Borne Dis. 2018; 9: 485–489.

  • 10

    Suhrbier A, Jaffar-Bandjee MC, Gasque P. Arthritogenic alphaviruses – an overview. Nat Rev Rheumatol. 2012; 8; 420–429.

  • 11

    Lanciotti RS, Kosoy OL, Laven JJ, et al. Genetic and serologic properties of Zika virus associated with an epidemic, Yap State, Micronesia, 2007. Emerg Infect Dis. 2008; 14: 1232–1239.

  • 12

    Cao-Lormeau VM, Blake A, Mons S, et al. Guillain–Barré syndrome outbreak associated with Zika virus infection in French Polynesia: a case-control study. Lancet 2016; 387: 1531–1539.

  • 13

    Mlakar J, Korva M, Tul, N, et al. Zika virus associated with microcephaly. N Engl J Med. 2016; 374: 951–958.

  • 14

    World Health Organization. WHO Director-general summarizes the outcome of the Emergency Committee regarding clusters of microcephaly and Guillain–Barré syndrome. WHO, Geneva, February 2016. Available from: https://www.who.int/news/item/01-02-2016-who-director-general-summarizes-the-outcome-of-the-emergency-committee-regarding-clusters-of-microcephaly-and-guillain-barr%c3%a9-syndrome [accessed: February 18, 2021].

  • 15

    Giron S, Franke F, Decoppet A, et al. Vector-borne transmission of Zika virus in Europe, Southern France, August 2019. Euro Surveill. 2019; 24: 1900655.

  • 16

    Kim CR, Counotte M, Bernstein K, et al. Investigating the sexual transmission of Zika virus. Lancet Glob Health 2018; 6: e24–e25.

  • 17

    Musso D, Gubler DJ. Zika Virus. Clin Microbiol Rev. 2016; 29: 487–524.

  • 18

    Freitas DA, Souza-Santos R, Carvalho LM, et al. Congenital Zika syndrome: a systematic review. PLoS ONE 2020;15: e0242367.

  • 19

    Varjasi G, Póka R. Zika virus infection in pregnancy. [Zika-vírus-fertőzés terhességben.] Orv Hetil. 2017; 158: 563–571. [Hungarian]

  • 20

    European Centre for Disease Prevention and Control. Zika virus transmission worldwide. ECDC, Stockholm, 9 April 2019. Available from: https://www.ecdc.europa.eu/sites/portal/files/documents/zika-risk-assessment-9-april-2019.pdf [accessed: February 18, 2021].

  • 21

    World Health Organization. Dengue and severe Dengue. WHO, Geneva, 2021. Available from: https://www.who.int/news-room/fact-sheets/detail/dengue-and-severe-dengue [accessed: February 18, 2021].

  • 22

    Wilder-Smith A, Quam M, Sessions O, et al. The 2012 Dengue outbreak in Madeira: exploring the origins. Euro Surveill. 2014; 19: 20718. [Erratum: Euro Surveill. 2014; 19: 20725.]

  • 23

    Narayan R, Tripathi S. Intrinsic AD. The dark side of antibody dependent enhancement during Dengue infection. Front Cell Infect Microbiol. 2020; 10: 580096.

  • 24

    Yacoub S, Wills B. Dengue: an update for clinicians working in non-endemic areas. Clin Med (Lond). 2015; 15: 82–85.

  • 25

    Dissanayake HA, Seneviratne SL. Liver involvement in Dengue viral infections. Rev Med Virol. 2018; 28: e1971.

  • 26

    Thomas SJ, Yoon IK. A review of Dengvaxia®: development to deployment. Hum Vaccin Immunother. 2019; 15: 2295–2314.

  • 27

    Silva JV Jr, Ludwig-Begall LF, Oliveira-Filho EF, et al. A scoping review of Chikungunya virus infection: epidemiology, clinical characteristics, viral co-circulation complications, and control. Acta Trop. 2018; 188: 213–224.

  • 28

    Leparc-Goffart I, Nougairede A, Cassadou S, et al. Chikungunya in the Americas. Lancet 2014; 383: 514.

  • 29

    Amraoui F, Failloux AB. Chikungunya: an unexpected emergence in Europe. Curr Opin Virol. 2016; 21: 146–150.

  • 30

    Delisle E, Rousseau C, Broche B, et al. Chikungunya outbreak in Montpellier, France, September to October 2014. Euro Surveill. 2015; 20: 21108.

  • 31

    Calba C, Guerbois-Galla M, Franke F, et al. Preliminary report of an autochthonous Chikungunya outbreak in France, July to September 2017. Euro Surveill. 2017; 22: 17-00647.

  • 32

    Vairo F, Mammone A, Lanini S, et al., Chikungunya Lazio Outbreak Group. Local transmission of Chikungunya in Rome and the Lazio region, Italy. PLoS ONE 2018; 13: e0208896.

  • 33

    Venturi G, Di Luca M, Fortuna C, et al. Detection of a Chikungunya outbreak in Central Italy, August to September 2017. Euro Surveill. 2017; 22: 17-00646.

  • 34

    Javelle E, Ribera A, Degasne I, et al. Specific management of post-Chikungunya rheumatic disorders: a retrospective study of 159 cases in Reunion Island from 2006–2012. PLoS Negl Trop Dis. 2015; 9: e0003603.

  • 35

    Cerny T, Schwarz M, Schwarz U, et al. The range of neurological complications in Chikungunya fever. Neurocrit Care 2017; 27: 447–457.

  • 36

    Van den Bossche D, Cnops L, Van Esbroeck M. Recovery of Dengue virus from urine samples by real-time RT-PCR. Eur J Clin Microbiol Infect Dis. 2015; 34: 1361–1367.

  • 37

    Alagarasu K, Kakade MB, Bachal RV, et al. Use of whole blood over plasma enhances the detection of Dengue virus RNA: possible utility in Dengue vaccine trials. Arch Virol. 2021; 166: 587–591.

  • 38

    Bingham AM, Cone M, Mock V, et al. Comparison of test results for Zika virus RNA in urine, serum, and saliva specimens from persons with travel-associated Zika virus disease – Florida, 2016. MMWR Morb Mortal Wkly Rep. 2016; 65: 475–478.

  • 39

    Voermans JJ, Pas SD, van der Linden A, et al. Whole-blood testing for diagnosis of acute Zika virus infections in routine diagnostic setting. Emerg Infect Dis. 2019; 25: 1394–1396.

  • 40

    Mansuy JM, Lhomme S, Cazabat M, et al. Detection of Zika, Dengue and Chikungunya viruses using single-reaction multiplex real-time RT-PCR. Diagn Microbiol Infect Dis. 2018; 92: 284–287.

  • 41

    Comission implementing decision (EU) 2018/945 of 22 June 2018 on the communicable diseases and related special health issues to be covered by epidemiological surveillance as well as relevant case definitions. Official J EU 2018; 6.7: L 170. Available from: https://eur-lex.europa.eu/legal-content/EN/TXT/PDF/?uri=CELEX:32018D0945 [accessed: February 18, 2021].

  • 42

    Kassim FM, Izati MN, TgRogayah TA, et al. Use of Dengue NS1 antigen for early diagnosis of Dengue virus infection. Southeast Asian J Trop Med Public Health 2011; 42: 562–569.

  • 43

    Muller DA, Depelsenaire AC, Young PR. Clinical and laboratory diagnosis of Dengue virus infection. J Infect Dis. 2017; 215(Suppl 2): S89–S95.

  • 44

    Caglioti C, Lalle E, Castilletti C, et al. Chikungunya virus infection: an overview. New Microbiol. 2013; 36: 211–227.

  • 45

    European Centre for Disease Prevention and Control. Interim guidance for healthcare providers and Zika virus laboratory diagnosis. ECDC, Stockholm, 1 Apr 2016. Available from: https://www.ecdc.europa.eu/en/publications-data/interim-guidance-healthcare-providers-and-zika-virus-laboratory-diagnosis [accessed: February 18, 2021].

  • 46

    Nagy O, Nagy A, Tóth S, et al. Imported Zika virus infections in Hungary between 2016 and 2018. Acta Microbiol Immunol Hung. 2019; 66: 423–442.

  • 47

    European Centre for Disease Prevention and Control. Aedes albopictus – current known distribution. ECDC, Stockholm, May 2020. Available from: https://www.ecdc.europa.eu/en/publications-data/aedes-albopictus-current-known-distribution-may-2020 [accessed: February 18, 2021].

  • 48

    Driggers RW, Ho CY, Korhonen EM, et al. Zika virus infection with prolonged maternal viremia and fetal brain abnormalities. N Engl J Med. 2016; 374: 2142–2151.

  • Collapse
  • Expand

Főszerkesztő - Editor-in-Chief:
 
Zoltán PAPP (professor emeritus, Semmelweis Egyetem, Szülészeti és Nőgyógyászati Klinika, Budapest)

Read the professional career of Zoltán PAPP HERE.

All scientific publications of Zoltán PAPP are collected in the Hungarian Scientific Bibliography.

Főszerkesztő-helyettesek - Assistant Editors-in-Chief: 

  • Erzsébet FEHÉR (professor emeritus, Semmelweis Egyetem, Anatómiai, Szövet- és Fejlődéstani Intézet)
  • Krisztina HAGYMÁSI (egyetemi docens, Semmelweis Egyetem, I. Sebészeti és Intervenciós Gasztroenterológiai Klinika, Budapest)

Főmunkatársak - Senior Editorial Specialists:

  • László KISS (a Debreceni Egyetem habilitált doktora)
  • Gabriella LENGYEL (ny. egyetemi docens, Semmelweis Egyetem, I. Sebészeti és Intervenciós Gasztroenterológiai Klinika, Budapest)
  • Alajos PÁR (professor emeritus, Pécsi Tudományegyetem, I. Belgyógyászati Klinika)

 A Szerkesztőbizottság tagjai – Members of the Editorial Board:

  • Péter ANDRÉKA (főigazgató, Gottsegen György Országos Kardiovaszkuláris Intézet, Nemzeti Szívinfartkus Regiszter, Budapest)
  • Géza ÁCS Jr. (egyetemi tanár Floridában)
  • Csaba BALÁZS (egyetemi tanár, Budai Endokrinközpont, Budapest)
  • Zoltán BENYÓ (egyetemi tanár, Semmelweis Egyetem, Transzlációs Medicina Intézet, Budapest)
  • Dániel BERECZKI (egyetemi tanár, Semmelweis Egyetem, Neurológiai Klinika, Budapest)
  • Anna BLÁZOVICS (professor emeritus, Semmelweis Egyetem, Farmakognóziai Intézet, Budapest)
  • Lajos BOGÁR (egyetemi tanár, Pécsi Tudományegyetem, Klinikai Központ, Aneszteziológiai és Intenzív Terápiás Intézet, Pécs)
  • Katalin DARVAS (professor emeritus, Semmelweis Egyetem, Általános Orvostudományi Kar, Sebészeti, Transzplantációs és Gasztroenterológiai Klinika, továbbá Aneszteziológiai és Intenzív Terápiás Klinika, Budapest)
  • Elek DINYA (professor emeritus, biostatisztikus, Semmelweis Egyetem, Budapest)
  • Attila DOBOZY (professor emeritus, Szegedi Tudományegyetem, Bőrgyógyászati Klinika, Szeged)
  • Levente EMŐDY (professor emeritus, Pécsi Tudományegyetem, Általános Orvostudományi Kar, Mikrobióligiai Intézet, Pécs)
  • András FALUS (professor emeritus, Semmelweis Egyetem, Genetikai, Sejt- és Immunbiológiai Intézet, Budapest)
  • Béla FÜLESDI (egyetemi tanár, Debreceni Egyetem, Aneszteziológiai és Intenzív Terápiás Klinika, Debrecen)
  • István GERA (professor emeritus, Semmelweis Egyetem, Fogorvostudományi Kar, Parodontológiai Klinika, Budapest)
  • Beáta GASZTONYI (egyetemi magántanár, kórházi főorvos, Zala Megyei Kórház, Belgyógyászat, Zalaegerszeg)
  • Béla GÖMÖR (professor emeritus, Budai Irgalmasrendi Kórház, Reumatológiai Osztály, Budapest)
  • János HANKISS (professor emeritus, Markusovszky Lajos Oktató Kórház, Belgyógyászati Osztály, Szombathely)
  • Katalin HEGEDŰS (habilitált egyetemi docens, Semmelweis Egyetem, Általános Orvosi Kar, Magatartástudományi Intézet, Budapest)
  • Andor HIRSCHBERG (c. egyetemi tanár, Észak-budai Szent János Centrumkórház, Fül-, Orr-, Gége-, Fej-Nyak és Szájsebészeti Osztály, Budapest)
  • Örs Péter HORVÁTH (professor emeritus, Pécsi Tudományegyetem, Sebészeti Klinika, Pécs)
  • Béla HUNYADY (egyetemi tanár, Somogy Megyei Kaposi Mór Kórház, Belgyógyászat, Kaposvár)
  • Péter IGAZ (egyetemi tanár, Semmelweis Egyetem, Belgyógyászati és Onkológiai Klinika, Budapest)
  • Ferenc JAKAB (c. egyetemi tanár, Uzsoki Utcai Kórház, Sebészet, Budapest)
  • Zoltán JANKA (professor emeritus, Szegedi Tudományegyetem, Szent-Györgyi Albert Orvostudományi Kar és Klinikai Központ, Pszichiátriai Klinika, Szeged)
  • András JÁNOSI (c. egyetemi tanár, Gottsegen György Országos Kardiovaszkuláris Intézet, Nemzeti Szívinfartkus Regiszter, Budapest)
  • György JERMENDY (egyetemi tanár, Bajcsy-Zsilinszky Kórház, Belgyógyászat, Budapest)
  • László KALABAY (egyetemi tanár, Semmelweis Egyetem, Családorvosi Tanszék, Budapest)
  • Anita KAMONDI (egyetemi tanár, Országos Mentális, Ideggyógyászati és Idegsebészeti Intézet, Neurológiai Osztály, Budapest)
  • János KAPPELMAYER (egyetemi tanár, Debreceni Egyetem, Laboratóriumi Medicina Intézet, Debrecen)
  • Éva KELLER (ny. egyetemi tanár, Semmelweis Egyetem, Igazságügyi és Biztosítás-orvostani Intézet, Budapest)
  • András KISS (egyetemi tanár, Semmelweis Egyetem, II. Patológiai Intézet, Budapest)
  • Lajos KULLMANN (ny. egyetemi tanár, Országos Rehabilitációs Intézet, Budapest)
  • Emese MEZŐSI (egyetemi tanár, Pécsi Tudományegyetem, I. Belgyógyászati Klinika, Pécs)
  • László MÓDIS (egyetemi tanár, Debreceni Egyetem, Általános Orvostudományi Kar, Szemészeti Tanszék, Debrecen)
  • Györgyi MŰZES (egyetemi docens, Semmelweis Egyetem, Belgyógyászati és Hematológiai Klinika, Budapest)
  • Bálint NAGY (egyetemi tanár, Debreceni Egyetem, Humángenetikai Tanszék, Debrecen)
  • Endre NAGY (egyetemi tanár, Debreceni Egyetem, Belgyógyászati Intézet, Debrecen) 
  • Péter NAGY (egyetemi tanár, Semmelweis Egyetem, I. Patológiai és Kísérleti Rákkutató Intézet, Budapest)
  • Viktor NAGY (főorvos, Semmelweis Egyetem, Belgyógyászati és Hematológiai Klinika, Budapest)
  • Zoltán Zsolt NAGY (egyetemi tanár, Semmelweis Egyetem, Szemészeti Klinika, Budapest)
  • György PARAGH (professor emeritus, Debreceni Egyetem, Általános Orvostudományi Kar, Belgyógyászati Intézet, Debrecen)
  • Attila PATÓCS (tudományos főmunkatárs, Semmelweis Egyetem, Belgyógyászati és Hematológiai Klinika, Budapest)
  • Edit PAULIK (intézetvezető egyetemi tanár, Szegedi Tudományegyetem, Szent-Györgyi Albert Orvostudományi Kar, Népegészségtani Intézet, Szeged)
  • Gabriella PÁR (egyetemi docens, Pécsi Tudományegyetem, I. Belgyógyászati Klinika)
  • György PFLIEGLER (egyetemi tanár, Debreceni Egyetem, Ritka Betegségek Tanszéke, Debrecen)
  • István RÁCZ (egyetemi tanár, főorvos, Petz Aladár Megyei Oktató Kórház, Belgyógyászat, Győr)
  • Bernadette ROJKOVICH (osztályvezető főorvos, Betegápoló Irgalmasrend Budai Irgalmasrendi Kórház, Budapest)
  • Imre ROMICS (professor emeritus, Semmelweis Egyetem, Urológiai Klinika, Budapest)
  • László Jr. ROMICS (Angliában dolgozik)
  • Ferenc ROZGONYI (professor emeritus, Semmelweis Egyetem, Laboratóriumi Medicina Intézet, Budapest)
  • Imre RURIK (egyetemi tanár, Debreceni Egyetem, Családorvosi és Foglalkozás-egészségügyi Tanszék, Debrecen)
  • Péter SCHMIDT (házi gyermekorvos, Győr)
  • Gábor SIMONYI (vezető főorvos, Szent Imre Kórház, Anyagcsere Központ, Budapest)
  • Gábor Márk SOMFAI (egyetemi docens, Semmelweis Egyetem, Szemészeti Klinika, Budapest)
  • Anikó SOMOGYI (ny. egyetemi tanár, Semmelweis Egyetem, Belgyógyászati és Hematológiai Klinika, Budapest)
  • Péter SÓTONYI (professor emeritus, Semmelweis Egyetem, Igazságügyi és Biztosítás-orvostani Intézet, Budapest)
  • Péter Jr. SÓTONYI (egyetemi tanár, Semmelweis Egyetem, Városmajori Szív- és Érsebészeti Klinika, Budapest)
  • Ildikó SÜVEGES (professor emeritus, Semmelweis Egyetem, Szemészeti Klinika, Budapest)
  • György SZABÓ (professor emeritus, Semmelweis Egyetem, Arc-Állcsont-Szájsebészeti és Fogászati Klinika, Budapest)
  • György SZEIFERT (egyetemi magántanár, Semmelweis Egyetem, Általános Orvostudományi Kar, Idegsebészeti Tanszék, Budapest)
  • Miklós SZENDRŐI (professor emeritus, Semmelweis Egyetem, Ortopédiai Klinika, Budapest)
  • Miklós TÓTH (egyetemi tanár, Semmelweis Egyetem, Belgyógyászati és Onkológiai Klinika, Budapest)
  • László TRINGER (professor emeritus, Semmelweis Egyetem, Pszichiátriai és Pszichoterápiás Klinika, Budapest)
  • Tivadar TULASSAY (professor emeritus, Semmelweis Egyetem, I. Gyermekgyógyászati Klinika, Budapest)
  • Zsolt TULASSAY (professor emeritus, Semmelweis Egyetem, Belgyógyászati és Hematológiai Klinika, Budapest)
  • Lívia VASAS (ny. könyvtárigazgató, Semmelweis Egyetem, Központi Könyvtár, Budapest)
  • Barna VÁSÁRHELYI (egyetemi tanár, Semmelweis Egyetem, Laboratóriumi Medicina Intézet, Budapest)
  • László VÉCSEI (professor emeritus, Szegedi Tudományegyetem, Neurológiai Klinika, Szeged)
  • Gábor WINKLER (egyetemi tanár, Szent János Kórház, Belgyógyászati Osztály, Budapest)

Nemzetközi szerkesztőbizottság - International Editorial Board:

  • Elnök/President Péter SÓTONYI (Budapest)
  • Ernest ADEGHATE (Al Ain)
  • Ferenc ANTONI (Edinburgh)
  • Maciej BANACH (Łódź)
  • Klára BERENCSI (Rosemont)
  • Angelo BIGNAMINI (Milano)
  • Anupam BISHAYEE (Signal Hill)
  • Hubert E. BLUM (Freiburg)
  • G. László BOROS (Los Angeles)
  • Frank A. CHERVENAK (New York)
  • József DÉZSY (Wien)
  • Peter ECKL (Salzburg)
  • Péter FERENCI (Wien)
  • Madelaine HAHN (Erlangen)
  • S. Tamás ILLÉS (Bruxelles)
  • Michael KIDD (Toronto)
  • Andrzej KOKOSZKA (Warsaw)
  • Márta KORBONITS (London)
  • Asim KURJAK (Zagreb)
  • Manfred MAIER (Wien)
  • Lajos OKOLICSÁNYI (Padova)
  • Amado Salvador PENA (Amsterdam)
  • Guliano RAMADORI (Goettingen)
  • Olivér RÁCZ (Košice)
  • Roberto ROMERO (Detroit)
  • Rainer SCHÖFL (Linz)
  • Zvi VERED (Tel Aviv)
  • Josef VESELY (Olomouc)
  • Ákos ZAHÁR (Hamburg)

Akadémiai Kiadó Zrt. 1117 Budapest
Budafoki út 187-189.
A épület, III. emelet
Phone: (+36 1) 464 8235
Email: orvosihetilap@akademiai.hu

  • Web of Science SCIE
  • Scopus
  • Medline
  • CABELLS Journalytics

2023  
Web of Science  
Journal Impact Factor 0.8
Rank by Impact Factor Q3 (Medicine, General & Internal)
Journal Citation Indicator 0.2
Scopus  
CiteScore 1.2
CiteScore rank Q3 (General Medicine)
SNIP 0.343
Scimago  
SJR index 0.214
SJR Q rank Q4

Orvosi Hetilap
Publication Model Hybrid
Submission Fee none
Article Processing Charge 900 EUR/article
Printed Color Illustrations 20 EUR (or 5000 HUF) + VAT / piece
Regional discounts on country of the funding agency World Bank Lower-middle-income economies: 50%
World Bank Low-income economies: 100%
Further Discounts Editorial Board / Advisory Board members: 50%
Corresponding authors, affiliated to an EISZ member institution subscribing to the journal package of Akadémiai Kiadó: 100%
Subscription fee 2025 Online subsscription: 962 EUR / 1157 USD
Print + online subscription: 1092 EUR / 1352 USD
Subscription Information Online subscribers are entitled access to all back issues published by Akadémiai Kiadó for each title for the duration of the subscription, as well as Online First content for the subscribed content.
Purchase per Title Individual articles are sold on the displayed price.

Orvosi Hetilap
Language Hungarian
Size A4
Year of
Foundation
1857
Volumes
per Year
1
Issues
per Year
52
Founder Markusovszky Lajos Alapítvány -- Lajos Markusovszky Foundation
Founder's
Address
H-1088 Budapest, Szentkriályi u. 46.
Publisher Akadémiai Kiadó
Publisher's
Address
H-1117 Budapest, Hungary 1516 Budapest, PO Box 245.
Responsible
Publisher
Chief Executive Officer, Akadémiai Kiadó
ISSN 0030-6002 (Print)
ISSN 1788-6120 (Online)

Monthly Content Usage

Abstract Views Full Text Views PDF Downloads
May 2024 0 36 5
Jun 2024 0 18 7
Jul 2024 0 23 14
Aug 2024 0 20 18
Sep 2024 0 39 13
Oct 2024 0 126 5
Nov 2024 0 37 1