Orvosi Hetilap
Volume/Issue:
Volume 166: Issue 10
A molekuláris diagnosztika lehetőségei onkohematológiai betegek invazív gombainfekcióinak ellátásában
Authors:
Erik Zajta Semmelweis Egyetem, Általános Orvostudományi Kar, Patológiai és Kísérleti Rákkutató Intézet, Molekuláris Diagnosztikai Labor Budapest, Üllői út 26., 1085 Magyarország

Search for other papers by Erik Zajta in
Current site
Google Scholar
PubMed Close
,
Gergely Peskó Semmelweis Egyetem, Általános Orvostudományi Kar, Belgyógyászati és Hematológiai Klinika Budapest Magyarország

Search for other papers by Gergely Peskó in
Current site
Google Scholar
PubMed Close
,
G. Dániel Knapp ELTE Eötvös Loránd Tudományegyetem, Természettudományi Kar, Biológiai Intézet, Növényszervezettani Tanszék Budapest Magyarország

Search for other papers by G. Dániel Knapp in
Current site
Google Scholar
PubMed Close
,
Eszter Vad Dél-pesti Centrumkórház – Országos Hematológiai és Infektológiai Intézet, Mikrobiológiai Profil, Központi Laboratórium Budapest Magyarország

Search for other papers by Eszter Vad in
Current site
Google Scholar
PubMed Close
,
Csaba Bödör Semmelweis Egyetem, Általános Orvostudományi Kar, Patológiai és Kísérleti Rákkutató Intézet, Molekuláris Diagnosztikai Labor Budapest, Üllői út 26., 1085 Magyarország

Search for other papers by Csaba Bödör in
Current site
Google Scholar
PubMed Close
, and
János Sinkó Dél-pesti Centrumkórház – Országos Hematológiai és Infektológiai Intézet, Hematológiai és Őssejt-transzplantációs Osztály Budapest Magyarország

Search for other papers by János Sinkó in
Current site
Google Scholar
PubMed Close
Pages:
363–376
Online Publication Date:
09 Mar 2025
Publication Date:
09 Mar 2025
Article Category:
Review Article
DOI:
https://doi.org/10.1556/650.2025.33241
Keywords:
invasive fungal infection; mycosis; oncohematology; molecular diagnostics; DNA barcoding;
Keywords (Hungarian):
invazív gombafertőzés; mycosis; onkohematológia; molekuláris diagnosztika; DNS-vonalkód;
Open access

Invasive fungal infections pose a particular threat to oncohematological patients. Candidiasis, aspergillosis, mucormycosis, cryptococcosis and Pneumocystis pneumonia are the most common manifestations. Despite various available approaches (culture, histology, serology, imaging), diagnosis of invasive mycoses is challenging. Owing to rapid technological advancements, molecular biological methods are routinely used in diagnostics of bacterial and viral infections. At the same time, molecular tests can be of substantial assistance in the detection and characterization of mycoses, therefore several international guidelines contain recommendations on them. Although some molecular fungal tests have been introduced in Hungarian healthcare, their widespread application is lagging. Here, we provide a review of molecular tools for clinical fungal diagnostics focusing on taxon-specific polymerase chain reaction (PCR), sequencing techniques (Sanger sequencing, next-generation sequencing) and their roles in identification of fungal pathogens and detection of resistance to antifungal medication. Tests available in South-Pest Central Hospital – National Institute of Hematology and Infectious Diseases and at the Department of Pathology and Experimental Cancer Research of Semmelweis University are briefly discussed. Finally, the utility of molecular fungal diagnostics is demonstrated through two case reports. This article aims to contribute to larger implementation of molecular tools in fungal diagnostics in the Hungarian healthcare system. Orv Hetil. 2025; 166(10): 363–376.

Az onkohematológiai kórképekben szenvedő betegeket nagymértékben veszélyeztetik az invazív gombafertőzések. A leggyakrabban candidiasis, aspergillosis, mucormycosis, cryptococcosis, valamint Pneumocystis-pneumonia fordul elő. Az invazív mycosisok diagnosztikáját támogató többféle módszer (tenyésztés, szövettan, szerológia, képalkotó eljárások) ellenére kimutatásuk gyakran kihívást jelent. A gyors technológiai fejlődés következtében a molekuláris biológiai módszereket ma már rutinszerűen alkalmazzák a baktérium- és vírusdiagnosztikában is. Ugyanakkor a molekuláris vizsgálatok hatékonyan segíthetik a mycosisok felismerését is, így számos nemzetközi orvosi irányelv tartalmaz ilyen irányú ajánlásokat. Bár a molekuláris gombavizsgálatok némelyike már megjelent a hazai egészségügyi ellátásban, széles körű elterjedésük nem történt meg. Összefoglaló közleményünkben bemutatjuk a gombák által okozott invazív infekciók molekuláris diagnosztikai eszköztárát. Kitérünk a különböző taxonspecifikus polimeráz-láncreakciókra (PCR), valamint a szekvenálási eljárásokra (Sanger-szekvenálás, újgenerációs szekvenálás), továbbá a gombák azonosítása, illetve az antifungális rezisztencia kimutatása terén betöltött szerepükre. Röviden ismertetjük a Dél-pesti Centrumkórház – Országos Hematológiai és Infektológiai Intézetben és a Semmelweis Egyetem Patológiai és Kísérleti Rákkutató Intézetében elérhető vizsgálatokat, végül két esetismertetésen keresztül mutatjuk be a módszerek gyakorlati alkalmazhatóságát. A jelen áttekintés hozzájárulást kíván nyújtani a molekuláris gombadiagnosztikai módszerek magyarországi orvosi ellátásban történő nagyobb mértékű implementációjához. Orv Hetil. 2025; 166(10): 363–376.
  • 1

    Denning DW. Global incidence and mortality of severe fungal disease. Lancet Infect Dis. 2024; 24: e428–e438.

  • 2

    Bassetti M, Azoulay E, Kullberg BJ, et al. EORTC/MSGERC definitions of invasive fungal diseases: summary of activities of the intensive care unit working group. Clin Infect Dis. 2021; 72(Suppl 2): S121–S127.

  • 3

    Blot SI, Taccone FS, Van den Abeele AM, et al. A clinical algorithm to diagnose invasive pulmonary aspergillosis in critically ill patients. Am J Respir Crit Care Med. 2012; 186: 56–64.

  • 4

    Bulpa P, Dive A, Sibille Y. Invasive pulmonary aspergillosis in patients with chronic obstructive pulmonary disease. Eur Respir J. 2007; 30: 782–800.

  • 5

    Donnelly JP, Chen SC, Kauffman CA, et al. Revision and update of the consensus definitions of invasive fungal disease from the European Organization for Research and Treatment of Cancer and the Mycoses Study Group Education and Research Consortium. Clin Infect Dis. 2020; 71: 1367–1376.

  • 6

    Koehler P, Bassetti M, Chakrabarti A, et al. Defining and managing COVID-19-associated pulmonary aspergillosis: the 2020 ECMM/ISHAM consensus criteria for research and clinical guidance. Lancet Infect Dis. 2021; 21: e149–e162.

  • 7

    Young JH, Andes DR, Ardura MI, et al. Modeling invasive aspergillosis risk for the application of prophylaxis strategies. Open Forum Infect Dis. 2024; 11: ofae082.

  • 8

    Pásztor-Bazsó V, Kelemen Á, Varga Á, et al. First Hungarian report of Geotrichum capitatum/Saprochaetecapitata infection in an immunocompromised child. [Geotrichum capitatum/Saprochaete capitata fertőzés első hazai esete egy immunszupprimált gyermekben.] Orv Hetil. 2023; 164: 1034–1038. [Hungarian]

  • 9

    Sinkó J. Invasive fungal infections in patients with haematological malignancies. [Invazív gombafertőzések malignus hematológiai betegségekben.] Magy Onkol. 2017; 61: 75–80. [Hungarian]

  • 10

    Iszlai Z, Kiss-Tóth E, Karosi T. Mucormycosis of the paranasal sinuses. [Az orrmelléküregek mucormycosisa.] Orv Hetil. 2024; 165: 1878–1887. [Hungarian]

  • 11

    Lőrinczi C, Iliás Á. Esophageal candidiasis as an indicator condition. [Candidaoesophagitis mint indikátorbetegség.] Orv Hetil. 2023; 164: 878–880. [Hungarian]

  • 12

    Sinkó J, Sulyok M, Denning DW. Burden of serious fungal diseases in Hungary. Mycoses 2015; 58(Suppl): 29–33.

  • 13

    Cornely OA, Bassetti M, Calandra T, et al. ESCMID guideline for the diagnosis and management of Candida diseases 2012: non-neutropenic adult patients. Clin Microbiol Infect. 2012; 18(Suppl 7): 19–37.

  • 14

    Ullmann AJ, Akova M, Herbrecht R, et al. ESCMID guideline for the diagnosis and management of Candida diseases 2012: adults with haematological malignancies and after haematopoietic stem cell transplantation (HCT). Clin Microbiol Infect. 2012; 18(Suppl 7): 53–67.

  • 15

    Cornely OA, Alastruey-Izquierdo A, Arenz D, et al. Global guideline for the diagnosis and management of mucormycosis: an initiative of the European Confederation of Medical Mycology in cooperation with the Mycoses Study Group Education and Research Consortium. Lancet Infect Dis. 2019; 19: e405–e421.

  • 16

    Ullmann AJ, Aguado JM, Arikan-Akdagli S, et al. Diagnosis and management of Aspergillus diseases: executive summary of the 2017 ESCMID-ECMM-ERS guideline. Clin Microbiol Infect. 2018; 24(Suppl 1): e1–e38.

  • 17

    Maschmeyer G, Helweg-Larsen J, Pagano L, et al. ECIL guidelines for treatment of Pneumocystis jirovecii pneumonia in non-HIV-infected haematology patients. J Antimicrob Chemother. 2016; 71: 2405–2413.

  • 18

    Chang CC, Harrison TS, Bicanic TA, et al. Global guideline for the diagnosis and management of cryptococcosis: an initiative of the ECMM and ISHAM in cooperation with the ASM. Lancet Infect Dis. 2024; 24: e495–e512. Erratum: Lancet Infect Dis. 2024; 24: e485.

  • 19

    Willinger B, Kienzl D, Kurzai O. Diagnostics of fungal infections. In: Esser K, Kurzai O. (eds.) The Mycota. XII. Human Fungal Pathogens. Springer, Heidelberg, New York, 2014; pp. 229–263.

  • 20

    Shankland GS. Microscopy and culture of fungal disease. In: Kibbler CC, Barton R, Gow NA, et al. (eds.) Oxford Textbook of Medical Mycology. Oxford University Press, Oxford, 2018; pp. 283–288.

  • 21

    Lieberman JA, Bryan A, Mays JA, et al. High Clinical impact of broad-range fungal PCR in suspected fungal sinusitis. J Clin Microbiol. 2021; 59: e0095521.

  • 22

    Balajee SA, Sigler L, Brandt ME. DNA and the classical way: Identification of medically important molds in the 21st century. Med Mycol. 2007; 45:475–490.

  • 23

    Morris A, Norris KA. Colonization by Pneumocystis jirovecii and its role in disease. Clin Microbiol Rev. 2012; 25: 297–317.

  • 24

    Talhari S, Talhari C. Lobomycosis. Clin Dermatol. 2012; 30: 420–424.

  • 25

    Patel R. A Moldy Application of MALDI: MALDI-ToF mass spectrometry for fungal identification. J Fungi. 2019; 5: 4.

  • 26

    Meyer W, Irinyi L, Hoang MT, et al. Database establishment for the secondary fungal DNA barcode translational elongation factor 1α (TEF1α). Genome 2019; 62: 160–169.

  • 27

    Guarner J, Brandt ME. Histopathologic diagnosis of fungal infections in the 21st century. Clin Microbiol Rev. 2011; 24: 247–280.

  • 28

    Jensen HE. (ed.) Histopathologic diagnosis of invasive mycoses. Routledge CRC Press, Boca Raton, FL, 2023.

  • 29

    Lockhart SR, Bialek R, Kibbler CC, et al. Molecular techniques for genus and species determination of fungi from fresh and paraffin-embedded formalin-fixed tissue in the revised EORTC/MSGERC definitions of invasive fungal infection. Clin Infect Dis. 2021; 72(Suppl 2) S109–S113.

  • 30

    Wickes BL, Wiederhold NP. Molecular diagnostics in medical mycology. Nat Commun. 2018; 9: 5135.

  • 31

    Kidd SE, Chen SC, Meyer W, et al. A new age in molecular diagnostics for invasive fungal disease: are we ready? Front Microbiol. 2020; 10: 2903.

  • 32

    Acet-Öztürk N, Ömer-Topçu D, Vurat-Acar K, et al. Impact of revised EORTC/MSGERC 2020 criteria on diagnosis and prognosis of invasive pulmonary aspergillosis in patients with hematological malignancies undergoing bronchoscopy. J Mycol Med. 2022; 32: 101304.

  • 33

    Fierer N, Jackson JA, Vilgalys R, et al. Assessment of soil microbial community structure by use of taxon-specific quantitative PCR assays. Appl Environ Microbiol. 2005; 71: 4117–4120.

  • 34

    Schmittgen TD, Livak KJ. Analyzing real-time PCR data by the comparative CT method. Nat Protoc. 2008; 3: 1101–1108.

  • 35

    Czurda S, Lion T. Broad-spectrum molecular detection of fungal nucleic acids by PCR-based amplification techniques. Methods Mol Biol. 2017; 1508: 257–266.

  • 36

    Valero C, de la Cruz-Villar L, Zaragoza Ó, et al. New panfungal real-time PCR assay for diagnosis of invasive fungal infections. J Clin Microbiol. 2016; 54: 2910–2918.

  • 37

    White PL, Barnes RA. Molecular diagnosis of fungal disease. In: Kibbler CC, Barton R, Gow NAR, et al. (eds.) Oxford Textbook of Medical Mycology. Oxford University Press, Oxford, 2018; pp. 313–326.

  • 38

    Cuenca-Estrella M. Guidelines for the diagnosis of fungal disease. In: Kibbler CC, Barton R, Gow NAR, et al. (eds.) Oxford Textbook of Medical Mycology. Oxford University Press, Oxford, 2018; pp. 327–334.

  • 39

    Pfaller MA, Diekema DJ. Unusual fungal and pseudofungal infections of humans. J Clin Microbiol. 2005; 43: 1495–1504.

  • 40

    White PL, Wingard JR, Bretagne S, et al. Aspergillus polymerase chain reaction: systematic review of evidence for clinical use in comparison with antigen testing. Clin Infect Dis. 2015; 61: 1293–1303.

  • 41

    White PL, Bretagne S, Klingspor L, et al. Aspergillus PCR: one step closer to standardization. J Clin Microbiol. 2010; 48: 1231–1240.

  • 42

    Cruciani M, Mengoli C, Barnes R, et al. Polymerase chain reaction blood tests for the diagnosis of invasive aspergillosis in immunocompromised people. Cochrane Database Syst Rev. 2019; 9: CD009551.

  • 43

    Cruciani M, White PL, Mengoli C, et al. The impact of anti-mould prophylaxis on Aspergillus PCR blood testing for the diagnosis of invasive aspergillosis. J Antimicrob Chemother. 2021; 76: 635–638.

  • 44

    White PL, Alanio A, Brown L, et al. An overview of using fungal DNA for the diagnosis of invasive mycoses. Expert Rev Mol Diagn. 2022; 22: 169–184.

  • 45

    Lagrou K, Chen S, Masur H, et al. Pneumocystis jirovecii disease: basis for the revised EORTC/MSGERC invasive fungal disease definitions in individuals without human immunodeficiency virus. Clin Infect Dis. 2021; 72(Suppl 2): 114–120.

  • 46

    Martin-Loeches I, Antonelli M, Cuenca-Estrella M, et al. ESICM/ESCMID task force on practical management of invasive candidiasis in critically ill patients. Intensive Care Med. 2019; 45: 789–805.

  • 47

    Rocchi S, Scherer E, Mengoli C, et al. Interlaboratory evaluation of Mucorales PCR assays for testing serum specimens: a study by the fungal PCR initiative and the Modimucor study group. Med Mycol. 2021; 59: 126–138.

  • 48

    Dasmahapatra KK, Mallet J. Taxonomy: DNA barcodes: recent successes and future prospects. Heredity 2006; 97: 254–255.

  • 49

    Irinyi L, Lackner M, de Hoog GS, et al. DNA barcoding of fungi causing infections in humans and animals. Fungal Biol. 2016; 120: 125–136.

  • 50

    Schoch CL, Seifert KA, Huhndorf S, et al. Nuclear ribosomal internal transcribed spacer (ITS) region as a universal DNA barcode marker for Fungi. Proc Natl Acad Sci USA 2012; 109: 6241–6246.

  • 51

    Irinyi L, Serena C, Garcia-Hermoso D, et al. International Society of Human and Animal Mycology (ISHAM)-ITS reference DNA barcoding database – the quality controlled standard tool for routine identification of human and animal pathogenic fungi. Med Mycol. 2015; 53: 313–337.

  • 52

    Stielow JB, Lévesque CA, Seifert KA, et al. One fungus, which genes? Development and assessment of universal primers for potential secondary fungal DNA barcodes. Persoonia 2015; 35: 242–263.

  • 53

    Hoang MT, Irinyi L, Chen SC, et al. Dual DNA barcoding for the molecular identification of the agents of invasive fungal infections. Front Microbiol. 2019; 10: 1647.

  • 54

    Howard SJ. Multi-resistant aspergillosis due to Cryptic species. Mycopathologia 2014; 178: 435–439.

  • 55

    de Hoog GS, Haase G, Chaturvedi V, et al. Taxonomy of medically important fungi in the molecular era. Lancet Infect Dis. 2013; 13: 385–386.

  • 56

    Alastruey-Izquierdo A, Alcazar-Fuoli L, Cuenca-Estrella M. Antifungal susceptibility profile of Cryptic species of Aspergillus. Mycopathologia 2014; 178: 427–433. Erratum: Mycopathologia 2015; 179: 333–334.

  • 57

    Gautier M, Normand AC, Ranque S. Previously unknown species of Aspergillus. Clin Microbiol Infect. 2016; 22: 662–669.

  • 58

    Houbraken J, Kocsubé S, Visagie CM, et al. Classification of Aspergillus,Penicillium,Talaromyces and related genera (Eurotiales): an overview of families, genera, subgenera, sections, series and species. Stud Mycol. 2020; 95: 5–169.

  • 59

    Raja HA, Miller AN, Pearce CJ, et al. Fungal identification using molecular tools: a primer for the natural products research community. J Nat Prod. 2017; 80: 756–770.

  • 60

    Lücking R, Aime MC, Robbertse B, et al. Unambiguous identification of fungi: where do we stand and how accurate and precise is fungal DNA barcoding? IMA Fungus 2020; 11: 14.

  • 61

    Chen SC, Perfect J, Colombo AL, et al. Global guideline for the diagnosis and management of rare yeast infections: an initiative of the ECMM in cooperation with ISHAM and ASM. Lancet Infect Dis. 2021; 21: e375–e386. Erratum: Lancet Infect Dis. 2021; 21: e363. Erratum: Lancet Infect Dis. 2024; 24: e485.

  • 62

    Hoenigl M, Salmanton-García J, Walsh TJ, et al. Global guideline for the diagnosis and management of rare mould infections: an initiative of the European Confederation of Medical Mycology in cooperation with the International Society for Human and Animal Mycology and the American Society for Microbiology. Lancet Infect Dis. 2021; 21: e246–e257. Erratum: Lancet Infect Dis. 2021; 21: e81.

  • 63

    Campos PF, Gilbert TM. DNA extraction from formalin-fixed material. In: Shapiro B, Hofreiter M. (eds.) Ancient DNA. Methods Mol Biol. Humana Press, Totowa, NJ, 2012; pp. 81–85.

  • 64

    Gomez CA, Budvytiene I, Zemek AJ, et al. Performance of targeted fungal sequencing for culture-independent diagnosis of invasive fungal gisease. Clin Infect Dis. 2017; 65: 2035–2041.

  • 65

    Moncada PA, Budvytiene I, Ho DY, et al. Utility of DNA sequencing for direct identification of invasive fungi from fresh and formalin-fixed specimens. Am J Clin Pathol. 2013; 140: 203–208.

  • 66

    Douglas AP, Smibert OC, Bajel A, et al. Consensus guidelines for the diagnosis and management of invasive aspergillosis, 2021. Intern Med J. 2021; 51(Suppl 7): 143–176.

  • 67

    Hammond SP, Bialek R, Milner DA, et al. Molecular methods to improve diagnosis and identification of mucormycosis. J Clin Microbiol. 2020; 49: 2151–2153.

  • 68

    Gholinejad-Ghadi N, Shokohi T, Seifi Z, et al. Identification of Mucorales in patients with proven invasive mucormycosis by polymerase chain reaction in tissue samples. Mycoses 2018; 61: 909–915.

  • 69

    Rickerts V, Just-Nübling G, Konrad F, et al. Diagnosis of invasive aspergillosis and mucormycosis in immunocompromised patients by seminested PCR assay of tissue samples. Eur J Clin Microbiol Infect Dis. 2006; 25: 8–13.

  • 70

    Bialek R, Konrad F, Kern J, et al. PCR based identification and discrimination of agents of mucormycosis and aspergillosis in paraffin wax embedded tissue. J Clin Pathol. 2005; 58: 1180–1184.

  • 71

    Zhang X, Zhang L, Li Y, et al. Clinical performance of metagenomic next-generation sequencing for diagnosis of invasive fungal disease after hematopoietic cell transplant. Front Cell Infect Microbiol. 2024; 14: 1210857.

  • 72

    Consortium OPATHY, Gabaldón T. Recent trends in molecular diagnostics of yeast infections: from PCR to NGS. FEMS Microbiol Rev. 2019; 43: 517–547.

  • 73

    Hoang MTV, Irinyi L, Hu Y, et al. Long-reads-based metagenomics in clinical diagnosis with a special focus on fungal infections. Front Microbiol. 2022; 12: 708550.

  • 74

    Tsang CC, Teng JL, Lau SK, et al. Rapid genomic diagnosis of fungal infections in the age of next-generation sequencing. J Fungi (Basel) 2021; 7: 636.

  • 75

    Huygens S, Schauwvlieghe A, Wlazlo N, et al. Diagnostic value of microbial cell-free DNA sequencing for suspected invasive fungal infections: a retrospective multicenter cohort study. Open Forum Infect Dis. 2024; 11: ofae252.

  • 76

    Hong DK, Blauwkamp TA, Kertesz M, et al. Liquid biopsy for infectious diseases: sequencing of cell-free plasma to detect pathogen DNA in patients with invasive fungal disease. Diagn Microbiol Infect Dis. 2018; 92: 210–213.

  • 77

    Carvalhaes CG, Rhomberg PR, Huband MD, et al. Antifungal activity of isavuconazole and comparator agents against contemporaneous Mucorales isolates from USA, Europe, and Asia-Pacific. J Fungi (Basel) 2023; 9: 241.

  • Collapse
  • Expand
Cover Orvosi Hetilap
Orvosi Hetilap
Print ISSN:
0030-6002
Online ISSN:
1788-6120

Főszerkesztő - Editor-in-Chief:
 
Zoltán PAPP (professor emeritus, Semmelweis Egyetem, Szülészeti és Nőgyógyászati Klinika, Budapest)

Read the professional career of Zoltán PAPP HERE.

All scientific publications of Zoltán PAPP are collected in the Hungarian Scientific Bibliography.

Főszerkesztő-helyettesek - Assistant Editors-in-Chief: 

  • Erzsébet FEHÉR (professor emeritus, Semmelweis Egyetem, Anatómiai, Szövet- és Fejlődéstani Intézet)
  • Krisztina HAGYMÁSI (egyetemi docens, Semmelweis Egyetem, I. Sebészeti és Intervenciós Gasztroenterológiai Klinika, Budapest)

Főmunkatársak - Senior Editorial Specialists:

  • László KISS (a Debreceni Egyetem habilitált doktora)
  • Gabriella LENGYEL (ny. egyetemi docens, Semmelweis Egyetem, I. Sebészeti és Intervenciós Gasztroenterológiai Klinika, Budapest)
  • Alajos PÁR (professor emeritus, Pécsi Tudományegyetem, I. Belgyógyászati Klinika)

 A Szerkesztőbizottság tagjai – Members of the Editorial Board:

  • Péter ANDRÉKA (főigazgató, Gottsegen György Országos Kardiovaszkuláris Intézet, Nemzeti Szívinfartkus Regiszter, Budapest)
  • Géza ÁCS Jr. (egyetemi tanár Floridában)
  • Csaba BALÁZS (egyetemi tanár, Budai Endokrinközpont, Budapest)
  • Zoltán BENYÓ (egyetemi tanár, Semmelweis Egyetem, Transzlációs Medicina Intézet, Budapest)
  • Dániel BERECZKI (egyetemi tanár, Semmelweis Egyetem, Neurológiai Klinika, Budapest)
  • Anna BLÁZOVICS (professor emeritus, Semmelweis Egyetem, Farmakognóziai Intézet, Budapest)
  • Lajos BOGÁR (egyetemi tanár, Pécsi Tudományegyetem, Klinikai Központ, Aneszteziológiai és Intenzív Terápiás Intézet, Pécs)
  • Katalin DARVAS (professor emeritus, Semmelweis Egyetem, Általános Orvostudományi Kar, Sebészeti, Transzplantációs és Gasztroenterológiai Klinika, továbbá Aneszteziológiai és Intenzív Terápiás Klinika, Budapest)
  • Elek DINYA (professor emeritus, biostatisztikus, Semmelweis Egyetem, Budapest)
  • Attila DOBOZY (professor emeritus, Szegedi Tudományegyetem, Bőrgyógyászati Klinika, Szeged)
  • Levente EMŐDY (professor emeritus, Pécsi Tudományegyetem, Általános Orvostudományi Kar, Mikrobióligiai Intézet, Pécs)
  • András FALUS (professor emeritus, Semmelweis Egyetem, Genetikai, Sejt- és Immunbiológiai Intézet, Budapest)
  • Béla FÜLESDI (egyetemi tanár, Debreceni Egyetem, Aneszteziológiai és Intenzív Terápiás Klinika, Debrecen)
  • István GERA (professor emeritus, Semmelweis Egyetem, Fogorvostudományi Kar, Parodontológiai Klinika, Budapest)
  • Beáta GASZTONYI (egyetemi magántanár, kórházi főorvos, Zala Megyei Kórház, Belgyógyászat, Zalaegerszeg)
  • Béla GÖMÖR (professor emeritus, Budai Irgalmasrendi Kórház, Reumatológiai Osztály, Budapest)
  • János HANKISS (professor emeritus, Markusovszky Lajos Oktató Kórház, Belgyógyászati Osztály, Szombathely)
  • Katalin HEGEDŰS (habilitált egyetemi docens, Semmelweis Egyetem, Általános Orvosi Kar, Magatartástudományi Intézet, Budapest)
  • Andor HIRSCHBERG (c. egyetemi tanár, Észak-budai Szent János Centrumkórház, Fül-, Orr-, Gége-, Fej-Nyak és Szájsebészeti Osztály, Budapest)
  • Örs Péter HORVÁTH (professor emeritus, Pécsi Tudományegyetem, Sebészeti Klinika, Pécs)
  • Béla HUNYADY (egyetemi tanár, Somogy Megyei Kaposi Mór Kórház, Belgyógyászat, Kaposvár)
  • Péter IGAZ (egyetemi tanár, Semmelweis Egyetem, Belgyógyászati és Onkológiai Klinika, Budapest)
  • Ferenc JAKAB (c. egyetemi tanár, Uzsoki Utcai Kórház, Sebészet, Budapest)
  • Zoltán JANKA (professor emeritus, Szegedi Tudományegyetem, Szent-Györgyi Albert Orvostudományi Kar és Klinikai Központ, Pszichiátriai Klinika, Szeged)
  • András JÁNOSI (c. egyetemi tanár, Gottsegen György Országos Kardiovaszkuláris Intézet, Nemzeti Szívinfartkus Regiszter, Budapest)
  • György JERMENDY (egyetemi tanár, Bajcsy-Zsilinszky Kórház, Belgyógyászat, Budapest)
  • László KALABAY (egyetemi tanár, Semmelweis Egyetem, Családorvosi Tanszék, Budapest)
  • Anita KAMONDI (egyetemi tanár, Országos Mentális, Ideggyógyászati és Idegsebészeti Intézet, Neurológiai Osztály, Budapest)
  • János KAPPELMAYER (egyetemi tanár, Debreceni Egyetem, Laboratóriumi Medicina Intézet, Debrecen)
  • Éva KELLER (ny. egyetemi tanár, Semmelweis Egyetem, Igazságügyi és Biztosítás-orvostani Intézet, Budapest)
  • András KISS (egyetemi tanár, Semmelweis Egyetem, II. Patológiai Intézet, Budapest)
  • Lajos KULLMANN (ny. egyetemi tanár, Országos Rehabilitációs Intézet, Budapest)
  • Emese MEZŐSI (egyetemi tanár, Pécsi Tudományegyetem, I. Belgyógyászati Klinika, Pécs)
  • László MÓDIS (egyetemi tanár, Debreceni Egyetem, Általános Orvostudományi Kar, Szemészeti Tanszék, Debrecen)
  • Györgyi MŰZES (egyetemi docens, Semmelweis Egyetem, Belgyógyászati és Hematológiai Klinika, Budapest)
  • Bálint NAGY (egyetemi tanár, Debreceni Egyetem, Humángenetikai Tanszék, Debrecen)
  • Endre NAGY (egyetemi tanár, Debreceni Egyetem, Belgyógyászati Intézet, Debrecen) 
  • Péter NAGY (egyetemi tanár, Semmelweis Egyetem, I. Patológiai és Kísérleti Rákkutató Intézet, Budapest)
  • Viktor NAGY (főorvos, Semmelweis Egyetem, Belgyógyászati és Hematológiai Klinika, Budapest)
  • Zoltán Zsolt NAGY (egyetemi tanár, Semmelweis Egyetem, Szemészeti Klinika, Budapest)
  • György PARAGH (professor emeritus, Debreceni Egyetem, Általános Orvostudományi Kar, Belgyógyászati Intézet, Debrecen)
  • Attila PATÓCS (tudományos főmunkatárs, Semmelweis Egyetem, Belgyógyászati és Hematológiai Klinika, Budapest)
  • Edit PAULIK (intézetvezető egyetemi tanár, Szegedi Tudományegyetem, Szent-Györgyi Albert Orvostudományi Kar, Népegészségtani Intézet, Szeged)
  • Gabriella PÁR (egyetemi docens, Pécsi Tudományegyetem, I. Belgyógyászati Klinika)
  • György PFLIEGLER (egyetemi tanár, Debreceni Egyetem, Ritka Betegségek Tanszéke, Debrecen)
  • István RÁCZ (egyetemi tanár, főorvos, Petz Aladár Megyei Oktató Kórház, Belgyógyászat, Győr)
  • Bernadette ROJKOVICH (osztályvezető főorvos, Betegápoló Irgalmasrend Budai Irgalmasrendi Kórház, Budapest)
  • Imre ROMICS (professor emeritus, Semmelweis Egyetem, Urológiai Klinika, Budapest)
  • László Jr. ROMICS (Angliában dolgozik)
  • Ferenc ROZGONYI (professor emeritus, Semmelweis Egyetem, Laboratóriumi Medicina Intézet, Budapest)
  • Imre RURIK (egyetemi tanár, Debreceni Egyetem, Családorvosi és Foglalkozás-egészségügyi Tanszék, Debrecen)
  • Péter SCHMIDT (házi gyermekorvos, Győr)
  • Gábor SIMONYI (vezető főorvos, Szent Imre Kórház, Anyagcsere Központ, Budapest)
  • Gábor Márk SOMFAI (egyetemi docens, Semmelweis Egyetem, Szemészeti Klinika, Budapest)
  • Anikó SOMOGYI (ny. egyetemi tanár, Semmelweis Egyetem, Belgyógyászati és Hematológiai Klinika, Budapest)
  • Péter SÓTONYI (professor emeritus, Semmelweis Egyetem, Igazságügyi és Biztosítás-orvostani Intézet, Budapest)
  • Péter Jr. SÓTONYI (egyetemi tanár, Semmelweis Egyetem, Városmajori Szív- és Érsebészeti Klinika, Budapest)
  • Ildikó SÜVEGES (professor emeritus, Semmelweis Egyetem, Szemészeti Klinika, Budapest)
  • György SZABÓ (professor emeritus, Semmelweis Egyetem, Arc-Állcsont-Szájsebészeti és Fogászati Klinika, Budapest)
  • György SZEIFERT (egyetemi magántanár, Semmelweis Egyetem, Általános Orvostudományi Kar, Idegsebészeti Tanszék, Budapest)
  • Miklós SZENDRŐI (professor emeritus, Semmelweis Egyetem, Ortopédiai Klinika, Budapest)
  • Miklós TÓTH (egyetemi tanár, Semmelweis Egyetem, Belgyógyászati és Onkológiai Klinika, Budapest)
  • László TRINGER (professor emeritus, Semmelweis Egyetem, Pszichiátriai és Pszichoterápiás Klinika, Budapest)
  • Tivadar TULASSAY (professor emeritus, Semmelweis Egyetem, I. Gyermekgyógyászati Klinika, Budapest)
  • Zsolt TULASSAY (professor emeritus, Semmelweis Egyetem, Belgyógyászati és Hematológiai Klinika, Budapest)
  • Lívia VASAS (ny. könyvtárigazgató, Semmelweis Egyetem, Központi Könyvtár, Budapest)
  • Barna VÁSÁRHELYI (egyetemi tanár, Semmelweis Egyetem, Laboratóriumi Medicina Intézet, Budapest)
  • László VÉCSEI (professor emeritus, Szegedi Tudományegyetem, Neurológiai Klinika, Szeged)
  • Gábor WINKLER (egyetemi tanár, Szent János Kórház, Belgyógyászati Osztály, Budapest)

Nemzetközi szerkesztőbizottság - International Editorial Board:

  • Elnök/President Péter SÓTONYI (Budapest)
  • Ernest ADEGHATE (Al Ain)
  • Ferenc ANTONI (Edinburgh)
  • Maciej BANACH (Łódź)
  • Klára BERENCSI (Rosemont)
  • Angelo BIGNAMINI (Milano)
  • Anupam BISHAYEE (Signal Hill)
  • Hubert E. BLUM (Freiburg)
  • G. László BOROS (Los Angeles)
  • Frank A. CHERVENAK (New York)
  • József DÉZSY (Wien)
  • Peter ECKL (Salzburg)
  • Péter FERENCI (Wien)
  • Madelaine HAHN (Erlangen)
  • S. Tamás ILLÉS (Bruxelles)
  • Michael KIDD (Toronto)
  • Andrzej KOKOSZKA (Warsaw)
  • Márta KORBONITS (London)
  • Asim KURJAK (Zagreb)
  • Manfred MAIER (Wien)
  • Lajos OKOLICSÁNYI (Padova)
  • Amado Salvador PENA (Amsterdam)
  • Guliano RAMADORI (Goettingen)
  • Olivér RÁCZ (Košice)
  • Roberto ROMERO (Detroit)
  • Rainer SCHÖFL (Linz)
  • Zvi VERED (Tel Aviv)
  • Josef VESELY (Olomouc)
  • Ákos ZAHÁR (Hamburg)

Akadémiai Kiadó Zrt. 1117 Budapest
Budafoki út 187-189.
A épület, III. emelet
Phone: (+36 1) 464 8235
Email: orvosihetilap@akademiai.hu

  • Web of Science SCIE
  • Scopus
  • Medline
  • CABELLS Journalytics

2023  
Web of Science  
Journal Impact Factor 0.8
Rank by Impact Factor Q3 (Medicine, General & Internal)
Journal Citation Indicator 0.2
Scopus  
CiteScore 1.2
CiteScore rank Q3 (General Medicine)
SNIP 0.343
Scimago  
SJR index 0.214
SJR Q rank Q4

Orvosi Hetilap
Publication Model Hybrid
Submission Fee none
Article Processing Charge 900 EUR/article
Printed Color Illustrations 20 EUR (or 5000 HUF) + VAT / piece
Regional discounts on country of the funding agency World Bank Lower-middle-income economies: 50%
World Bank Low-income economies: 100%
Further Discounts Editorial Board / Advisory Board members: 50%
Corresponding authors, affiliated to an EISZ member institution subscribing to the journal package of Akadémiai Kiadó: 100%
Subscription fee 2025 Online subsscription: 962 EUR / 1157 USD
Print + online subscription: 1092 EUR / 1352 USD
Subscription Information Online subscribers are entitled access to all back issues published by Akadémiai Kiadó for each title for the duration of the subscription, as well as Online First content for the subscribed content.
Purchase per Title Individual articles are sold on the displayed price.

Orvosi Hetilap
Language Hungarian
Size A4
Year of
Foundation		 1857
Volumes
per Year		 1
Issues
per Year		 52
Founder Markusovszky Lajos Alapítvány -- Lajos Markusovszky Foundation
Founder's
Address		 H-1088 Budapest, Szentkriályi u. 46.
Publisher Akadémiai Kiadó
Publisher's
Address		 H-1117 Budapest, Hungary 1516 Budapest, PO Box 245.
Responsible
Publisher		 Chief Executive Officer, Akadémiai Kiadó
ISSN 0030-6002 (Print)
ISSN 1788-6120 (Online)

Monthly Content Usage

Abstract Views Full Text Views PDF Downloads
Oct 2024 0 0 0
Nov 2024 0 0 0
Dec 2024 0 0 0
Jan 2025 0 0 0
Feb 2025 0 0 0
Mar 2025 0 234 182
Apr 2025 0 0 0